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Anaïs ALQUEZAR

SAINT JEURE D'AY

En résumé

Mes compétences :
Culture cellulaire
Immunohistochimie
Immunofluorescence
Peaux reconstruites
Western Blotting
Biologie moléculaire

Entreprises

  • LabSkin Creations - Technicienne de laboratoire

    2017 - maintenant
  • iDD-Biotech - Technicienne de laboratoire en immunologie

    2015 - 2017 Technicienne de recherche en biologie cellulaire dans l'équipe d'immunologie.

    Techniques utilisées : culture cellulaire : entretien de lignées (cancéreuses et hybridomes) avec banque, vérification de contamination par les mycoplasmes, phénotypage par cytométrie en flux et extraction de macrophages sur souris.

    Analyses des mécanismes d’action des anticorps à l’aide de la cytométrie en flux, ELISA et Bio-assay. Mais aussi analyses des mécanismes de mort cellulaire avec utilisation de poche de sang total ou après extraction des PBMNC pour cytométrie ou Bio-assay.

    Formation à la purification des anticorps.
  • I-STEM - Assistante Ingénieur

    CORBEIL ESSONNES 2014 - 2015 Dans l'équipe Génodermatoses dirigée par le Dr Christine BALDESCHI.

    Techniques utilisées : différenciation de cellules souches pluripotentes (iPS et hES) en mélanocyte et kératinocyte avec entretien des lignées et banque, immuno-marquages, extraction ARN, RT-PCR, cytométrie en flux, Western Blot.
  • L'Oréal - Apprentie technicienne de recherche

    PARIS 2013 - 2014 CDD (12 mois) en apprentissage Licence Professionnelle Industries Chimiques et Pharmaceutiques option Biotechnologies chez L'Oréal (Aulnay sous-bois). Au sein de la recherche avancée dans le Département de la recherche biologique et clinique dans l'équipe Lumière et Pigmentation de Françoise BERNERD sous le tutorat Juliette SOK.

    Projet : Analyse de la variabilité individuelle de la réponse aux UV en fonction de la pigmentation constitutive.

    Techniques utilisées : Reconstruction de peaux reconstruites pigmentées, cultures cellulaires
    (Kératinocytes, fibroblastes, mélanocytes), coupes de peaux au cryostat, marquages
    immunohistochimiques, utilisation d'un scanner de lame Hamamatsu Nanozommer.
  • CNRS - Stage

    Paris 2013 - 2013 (8 semaines) au Laboratoire de Biométrie et Biologie Evolutive (UMR- CNRS 5558) dans l'équipe « Eléments transposables, Evolution, Population » sur le campus de la DOUA à Villeurbanne (69).
    Etude des éléments transposables chez la drosophile par des techniques de biologie moléculaire et biologie cellulaire : extraction d'ADNg, PCR, clonage, digestion, transfection.
  • CNRS - Stage

    Paris 2012 - 2012 (8 semaines) au Laboratoire de Biométrie et Biologie Evolutive (UMR- CNRS 5558)
    dans l'équipe « Eléments transposables, Evolution, Population » sur le campus de la DOUA à Villeurbanne (69).
    Etude des éléments transposables chez la drosophile par des techniques de biologie moléculaire et biologie cellulaire : PCR, clonage Gateway, extraction d'ADNp.

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