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Audrey BAYOUT

Paris

En résumé

Mes compétences :
Médecine nucléaire
Transformation bactérienne
Biothérapies
Radioimmunothérapie
Culture cellulaire
Transfection cellulaire
Histologie
Clonage
Fusion cellulaire (hybridome)
Immunohistochimie
Biologie moléculaire
PCR
Cytométrie en flux
Production protéines recombinantes
ELISA
Western blot
Expérimentation animale
Oncologie
Purification des protéines
Production anticorps monoclonaux
Biologie cellulaire
Biotechnologies

Entreprises

  • Cnrs - Ingénieur

    Paris 2017 - maintenant Projet CARAT (Consortium pour des Applications en Radio Alpha Thérapie)

    Test in vitro et in vivo de molécules anti-cancéreuses (radio-immunothérapie alpha) - toxicité, biodistribution, efficacité...

    Expérimentation animale (module théorique de la formation de l'université de Tours suivi en Avril 2018):
    - injections sous-cutanée, intra-péritonéale et intraveineuse
    - imagerie par bioluminescence et SPECT-CT
    - anesthésie et euthanasie, prélèvements sanguins
    - suivi avec grille de score et mesure du volume tumoral

    Analyses anatomopathologiques + immunofluorescence (microscope Nikon - NIS-Element AR)

  • Inra - Ingénieur d'étude

    Paris 2017 - 2017 Purification des protéines de tournesol - système Akta avant et Akta explorer (GE), logiciel UNICORN
    Colonnes de gel filtration et échangeuses d'ions

    Robotisation pour dépôts en microplaque - robot Biomek 3000

    Projet Phenoleo : Valorisation des composés phénoliques d'oléagineux issus du bioraffinage

  • INRA - Assistante Ingénieur

    Paris 2016 - 2016 Poste d'assistante ingénieur faisant suite au stage de M2P

  • INRA - Stagiaire

    Paris 2016 - 2016 Ce stage de 6 mois, réalisé pour la validation de mon M2 professionnel, consiste dans un premier temps en la production d'IgE recombinantes, ceci dans le cadre des allergies alimentaires et plus particulièrement de l'allergie à la protéine oméga-5 du gluten. Après obtention par biologie moléculaire, la production des IgE est possible par transfection de cellules HEK. Les anticorps sont ensuite caractérisés par western blot et ELISA, puis leur activité est mesurée en effectuant un test de dégranulation de basophiles.
    Dans un second temps, ce stage consiste en la production de deux anticorps monoclonaux dirigés contre deux protéines du colza. Cela passe alors par l'immunisation de souris, la fusion des cellules lymphocytaires avec des cellules de myélome, et la caractérisation des clones d'intérêt puis leur maintien en culture jusqu'à leur congélation.

  • EA6309 "Maintenance Myélinique et Neuropathies Périphériques" - Stagiaire

    2015 - 2015 Ce stage de 2 mois réalisé dans le cadre de mon année de M1 a consisté en l'étude de la ré-innervation cutanée après brûlure, réalisée à l'aide d'un modèle de neuropathie chez le rat. Ce modèle a été obtenu par injection de résiniferatoxine, une toxine rendant les petites fibres nerveuses inactives, mais sans les détériorer. Après induction d'une brûlure chez l'animal, la ré-innervation cutanée a été dans un premier temps étudiée au niveau tissulaire sur des coupes histologiques pour observer le remodelage du tissu. Dans un second temps, elle a été étudiée au niveau moléculaire, par western blot et par immunohistochimie, à l'aide de plusieurs marqueurs spécifiques des différents types de fibres nerveuses existantes.

    Co-auteur de « Laverdet B., Girard D., Bayout A., Bordeau N., Demiot C. & Desmoulière A. (2016) – Effects of small-fiber neuropathy induced by resiniferatoxin on skin healing and axonal regrowth after burn. 1–11. doi:10.1016/j.burns.2016.09.016»

  • CNRS UMR 7276 « contrôle des réponses immunes B et des lymphoproliférations » - Stagiaire

    2013 - 2013 Ce stage volontaire de 6 semaines avait pour but de découvrir le monde des laboratoires et de me familiariser avec la recherche scientifique. J'ai pu y découvrir de nombreuses techniques telles que la PCR, l'électrophorèse, la culture cellulaire, le tri cellulaire, la cytométrie en flux...

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