Emmanuel GAMELAS MAGALHAES

En résumé

Entreprises

• Genosafe - Assistant de laboratoire

  2015 - maintenant

• Cellectis SA - Département Production - Ingénieur Biologie Moléculaire

  2010 - 2014 Cellectis est une société de biotechnologie pionnière dans l’ingénierie des génomes. Elle est spécialisée dans le développement des méganucléases et TAL nucléases.
  
  Responsable de la partie biologie moléculaire de la plateforme de production des nucléases (méganucléases et TAL nucléases); encadrement d’un groupe de 10 personnes.
  
  Proposition, élaboration et respect du cahier des charges,
  Création et mise en place des protocoles en biologie moléculaire.
  
  Conception, optimisation et gestion du séquençage des nucléases sur AbiPrism 3730 (48 capillaires) au niveau de la plateforme de production des nucléases.
  
  Mise en place d’un système de qualité interne sur la plateforme de production.- Contrôle qualité sur produits de base, intra process et sur produits finis.
  
  Formation et accompagnement des nouveaux techniciens
  
  
  
  
  
  

• Cellectis SA - Département Production - Assistant ingénieur Biologie Moléculaire

  2009 - 2010 Cellectis est une société de biotechnologie pionnière dans l’ingénierie des génomes. Elle est spécialisée dans le développement des méganucléases.
  
  Responsable de la partie biologie moléculaire du développement des méganucléases. Encadrement d’un groupe de 7 personnes.
  
  Mise en place des procédures de productions, optimisation et validation des procédés et du matériel de production
  
  

• Cellectis SA - Département Production - Technicien supérieur en Biologie Moléculaire

  2007 - 2009 Cellectis est une société de biotechnologie pionnière dans l’ingénierie des génomes. Elle est spécialisée dans le développement des méganucléases.
  
  Participation à la mise en place des clonages, sous-clonages et mutagénèse des produits.
  
  Construction à haut débit des banques de nucléases (méganucléases).
  
  Maintenance et gestion des banques de nucléases (méganucléases).
  
  
  

• Biométhodes SA - Technicien supérieur en Biologie Moléculaire

  2003 - 2007 Mise en place de la plateforme de séquençage sur AbiPrism 3100 et 3730XL (format 4 et 96 capillaires)
  
  Mise en place de la synthèse d’oligonucléotides
  
  Séquençage haut débit, synthèse de gène, d’oligonucléotides
  
  Criblage et mutagénèse dirigée à haut débit, expression recombinante, tests enzymatiques

• Laboratoire INSERM (unité 339) Hôpital Saint-Antoine - Paris (75) - Stagiaire

  2002 - 2002 Stage de 6 mois pour la validation des acquis du diplôme d’ingénieur des universités
  
  Unité de recherches en imagerie cellulaire des neurorécepteurs et physiologie neuroendocrinienne
  
  Sujet de stage : Etude de l’activation de la transcription du gène de la neurotensine dans des noyaux de cellules (culture cellulaire, fractionnement subcellulaire, transcription nucléaire, préparation d'ARN nucléaires, PCR quantitative et semi-quantitative, binding)

• UNION PRIMEURS LAURANCE - Suppléant de chef d’équipe

  2002 - 2003 Responsable d’une équipe de quatre préparateurs de commande.

• Laboratoire CRRET - CNRS Université Paris XII - Créteil (94) - Stagiaire

  2001 - 2001 Stage de 3 mois entrant dans le cursus de l'IUP de Génie Biologique & Informatique
  
  Laboratoire de Recherche sur la Croissance Cellulaire, la Réparation et la Régénération Tissulaires
  
  Sujet de stage : Dosage et extraction du 5-hydroxyoxindole dans des cerveaux de rats (dosage et détection en HPLC-ECD, dissection de Rats)

• Laboratoire UEIMA - INRA - Nantes (44) - Stagiaire

  2000 - 2000 Stage de 3 mois entrant dans le cursus de l'IUP de Génie Biologique & Informatique
  
  Unité d’Etudes des Interactions des Molécules Alimentaires
  
  Sujet de stage : Expression de la protéine Beta-lactoglobuline dans Pichia pastoris (clonage d’un gène, expression bactérienne, expression dans des levures, PCR, pousse de levure en fermenteur)

• Génoscope - Centre National de Séquençage - Evry (91) - Technicien de laboratoire

  1999 - 1999 Juillet-Aout 1999
  
  Equipe du professeur H. Roest Crollius
  
  Participation à la cartographie physique du génome de Tetraodon nigroviridis (hybridation sur membrane, PCR, réplication d’une banque d’ADNc)

Formations

• Groupe IMT - Institut Des Métiers Et Des Technologies D'Evry

  Evry 2015 - 2015 Formation qualifiante Bioproduction (les procédés biotechnologiques)
  
  Cours Théoriques et pratiques
  
  Travaux pratiques:
  
  Mise en situation sur les différents procédés Upstream et Downstream
  
  • Réalisation d’une culture cellulaire
  • Filtration frontale
  • UF/DF
  • Test d’intégrité des filtres
  • Calibration des électrodes de mesure
  • Initiation à la culture en Bioréacteurs (usage unique, wave et inox)

• Université Denis Diderot Paris VII (Paris)

  Paris 2015 - 2015 Formation qualifiante Cytométrie en flux
  
  •Utilisation des cytomètres: BD FACSCANTO II et BD Accuri C6
  • Analyse des données sur FlowJo - BD FACSDIVA
  • Marquages en immunofluorescence de protéines membranaires - intracellulaires avec des anticorps monoclonaux (> 3 marquages)
  • Analyse des variations intracellulaires du flux calcique
  • Analyse du cycle cellulaire
  • Initiation à la quantification d’analytes solubles sur billes cytométr

• CPE Lyon

  Villeurbanne 2014 - 2014 Formation Culture Cellulaire
  
  
  Travaux pratiques:
  
  Mise en situation dans une zone confinée et travail sous PSM
  Mise en culture cellules adhérentes/suspension
  Numération
  Test de viabilité
  Décongélation/congélation de cellules
  Infection virale
  Détection par immunomarquage
  Test d’hémaglutination
  Initiation à la culture en bio-générateur
  Suivi de la croissance cellulaire et des paramètres de culture

• Université Paris Est Val De Marne Créteil (UPEC)

  Creteil 2007 - 2007 Certification à l'expérimentation animale niveau II
  
  
  - MODULE n°1 : Aspects réglementaires et Éthique de l’expérimentation animale.
  
  - MODULE n°2 : Généralités sur l’animal de laboratoire.
  
  - MODULE n°3 : Anatomie, Physiologie, Comportement, Maniement, Contention, Administration de substances et prélèvements, Anesthésie et Euthanasie.
  
  - MODULE n°4 : Santé et pathologie animales.
  
  - MODULE n°5 : Travaux Pratiques (sur rongeurs).
  
  

• Université Evry Val D'Essonne

  Evry 1996 - 2002 Diplôme d’ingénieur des universités

• Lycée Robert Doisneau

  Corbeil Essonnes 1992 - 1996 Scientifique 'spécialité biologie'