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Aurélie COSSON

Paris

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En résumé

Mes compétences :
Organisation du travail
Relationnel facile
Transmission du savoir
Biologie moléculaire
Organisation
Rigueur
Biologie cellulaire
Microsoft Office

Entreprises

  • CNRS - Ingénieur d'études

    Paris 2016 - 2019

  • Parfums Christian Dior - Agent de conditionnement

    Paris 2014 - 2015

  • Inserm - Assistant-ingénieur

    PARIS 13 2013 - 2013 Dr Guislaine CARCELAIN « Immunité et Infection »
    INSERM U945, Hôpital de La Pitié Salpêtrière, Paris -
    Techniques d'immunologie : séparation de cellules mononucléées sanguines sur gradient de Ficoll, ELISPOT, cytométrie en flux

  • CNRS UMR7212 - INSERM U944 - Chercheur-doctorant

    2008 - 2012 Intitulé de mon Doctorat: "Caractérisation des protéines cellulaires interagissant avec l'intégrase du rétrotransposon Ty1 chez Saccharomyces cerevisiae" (Dr Pascale Lesage, "Rétrotransposition chez la levure: impact sur le génome et régulation")

    Mon projet s’est organisé autour de 3 axes:
    i) étude du rôle d’une sous-unité de l’ARN Polymérase III, AC40, dans le cycle de rétrotransposition de Ty1, l’interaction entre AC40 et l’intégrase de Ty1 ayant été mise en évidence par un crible double-hybride.
    ii) identifier de nouveaux partenaires de l'intégrase de Ty1 grâce à un crible double-hybride chez la levure, pour étudier ensuite leur rôle dans la rétrotransposition de Ty1.
    iii) mettre au point les conditions d'expression et de purification de l'intégrase recombinante de Ty1 afin de développer une étude in vitro de l'influence de la transcription et de la chromatine sur son activité.

    Compétences mises en œuvre:
    - Recherche bibliographique nécessaire pour établir un nouveau projet au laboratoire/veille scientifique et technologique
    - Mise au point de nouvelles techniques au laboratoire
    - Étude d'interactions protéiques: crible double-hybride chez la levure (collaboration Micheline FROMONT-RACINE, Institut Pasteur, Paris), co-immunoprécipitation, extraction protéique, détection de protéines grâce à la technique du Western blot, purification de protéines (collaboration Marc LAVIGNE, laboratoire Joliot-Curie, Ecole Normale Supérieure, Lyon)
    - Génétique : PCR, clonages, transformation puis extraction d'ADN de bactéries et levures, manipulation de la génétique de la levure

    Communication:
    - Présentation du travail réalisé lors de congrès et contribution à la rédaction d'articles scientifiques
    - Encadrement de collégiens et de lycéens pendant une année scolaire (1 mercredi par mois) autour d'un projet scientifique finalisé par un congrès

  • CNRS, Centre de Biophysique Moléculaire UPR 4301 - Stagiaire Master 2

    2007 - 2008 "Étude de la régulation de NF1, de la levure à l'Homme" (Dr Hélène Bénédetti, "Signalisation cellulaire et neurofibromatose")

    Techniques de biologie cellulaire - culture de cellules HEK-293, transfection transitoire
    Techniques de biologie moléculaire - PCR, clonages, transformation de bactéries et de levures, alignements de séquences d’ADN, co-immunoprécipitation protéique, extraction protéique, Western blot

  • CNRS, Centre de Biophysique Moléculaire UPR 4301 - Stagiaire Master 1

    2007 - 2007 "Étude préliminaire des phosphorylations de la Cytogaligine" (Dr Alain Legrand, "Mort cellulaire programmée")

    Techniques de biologie cellulaire - culture de cellules HeLa, transfection transitoire
    Techniques de biologie moléculaire – immunoprécipitation protéique, Western blot

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