Aurore TOMEZYK

En résumé

Entreprises

• Imabiotech - Ingenieur d'étude bio-analytique

  2015 - maintenant

• Laboratoires Biové - Technicienne RetD

  2015 - 2015 Validation de méthodes analytiques (HPLC) et microbiologiques (test de stérilité, efficacité de conservateurs, identification, biocharges, dosage, antibiogramme, cytométrie de flux)

• Laboratoires Biové - Technicienne chimie HPLC/microbiologie

  2015 - 2015 Au sein du département laboratoire de contrôle qualité:
  
  - Dosages sur chaîne HPLC Lachrom ;
  - Dosages microbiologiques ;
  - Etude de l'efficacité antimicrobienne des conservateurs des médicaments vétérinaires ;
  - Analyses chimiques : identifications (réactions/CCM) / dosages burettes, potentiométriques ...

• Imabiotech - Stagiaire R&D

  2014 - 2014 Stage de fin d'études dans une start-up spécialisée dans l'imagerie par spectrométrie de masse.
  
  Sujet :
  Développement d'une méthode de détection des protéines (après digestion enzymatique) sur tissu biologique pour analyse par MALDI-imagerie. Application à l'étude du Trastuzumab et de ses effets sur les cellules tumorales (cancer du sein, HER2/neu positive).
  
  --> Mise en place de SOP internes
  --> Poster 1er auteur présenté à l'AACR (San Diego, USA, avril 2014)
  --> Poster 1er auteur présenté à l'ASMS (Baltimore, USA, juin 2014)
  Mass Spectrometry Imaging of therapeutic antibodies: Distribution of unlabeled trastuzumab in CB.17 SCID mice implanted with the human breast BT474 xenograft
  
  
  Techniques acquises :
  - Spectrométrie de masse MS et MSMS (CID) sur MALDI-TOF et MALDI/ESI-FTICR (Bruker, Germany)
  - MALDI-imagerie
  - LESA (Liquid extraction surface analysis) pour analyse par MALDI et ESI-FTICR
  - Dépôt de matrice MALDI automatisée (SunCollect, Sunchrom, Germany)
  - Coloration histologique (HE)
  - IHC (immunohistochimie) / Microscope à fluorescence
  - Logiciels : Flex Analysis / Data Analysis / Flex Imaging (Bruker Daltonics, Germany) & Quantinetix (Imabiotech, France)

• CNRS, Laboratoire MSAP (Miniaturisation pour la Synthèse, l'Analyse et la Protéomique) - Stagiaire Recherche Master1

  Paris 2013 - 2013 Sujet : DEVELOPPEMENT METHODOLOGIQUE DE SEPARATION ORTHOGONALE DES PROTEINES DU PLASMA SANGUIN HUMAIN POUR LEUR ANALYSE EN PROTEINES INTACTES.
  
  J'ai mis au point une méthode de séparation des protéines du plasma sanguin humain grâce à un nouvel outil développé et vendu par Biorad : le Mini Prep Cell. Cet outil permet une séparation des protéines en fonction de leur masse moléculaire (sur un gel de polyacrylamide) et leur élution sous forme de fractions liquides.
  
  Techniques acquises :
  
  Séparation de protéines : HPLC (sur AKTA, colonne C4, colonne exclusion stérique), Mini prep cell (Biorad), électrophorèse 1D SDS-Page sur gel de polyacrylamide en conditions dénaturantes et non dénaturantes.
  Dosage de protéines (Bradford)
  Digestion à la trypsine des protéines en fractions liquides et des bandes de protéines sur gel
  Analyses sur MALDI/TOF-TOF en MS (PMF) et MSMS (logiciel 4000 series explorer) et analyses des résultats par la base de données MASCOT

• Cafac-Bajolet - Stagiaire technicienne R&D/Contrôle qualité

  2011 - 2012 Cafac-Bajolet est spécialisée dans le domaine des élastomères.
  
  Mes missions ont été de deux types :
  
  - Tests qualité des arrivages de caoutchouc
  > caractéristiques de vulcanisation (par rhéomètre Monsanto)
  > densité
  > dureté (utilisation d'un duromètre Shore)
  > résistance (dynamomètre)
  > compression
  > vieillissement
  
  - Projet de formulation : optimisation d'une formule de caoutchouc (utilisation du plan d'expérience de Bertzch).

• Diagast - Stagiaire technicienne R&D

  LOOS 2010 - 2010 Etude de l'effet de la lyophilisation d'un réactif de détermination de groupe sanguin sur ses caractéristiques (Avidité, réaction antigène-anticorps...)

Formations

• Université Lille 1 Sciences Et Technologies

  Villeneuve D'Ascq 2013 - 2014 Master 2 chimie bio-analytique
  
  http://master-chimiebiologie.univ-lille1.fr/v
  
  - RMN et spectrométrie de masse avancées
  - Application des méthodes d’analyse aux glycoconjugués (RMN et MS)
  - Méthode d’analyse des fonctions cellulaires des protéines
  - Biomolécules : structure et interactions moléculaires
  - Chimiométrie (initiation à l'utilisation du logiciel MATLAB)
  - Stratégies d’analyse des biomolécules

• Université Lille 1 Sciences Et Technologies

  Villeneuve D'Ascq 2012 - 2013 * Cours généraux sur les biomolécules, biosynthèses. Accentuations sur la biosynthèse des protéines (synthèse, modifications post-traductionnelles ...)
  
  * Techniques d'analyses des biomolécules : électrophorèse capillaire, HPLC, CPG, électrophorèse mono et bidimensionnelle, purification de protéines, biologie moléculaire (PCR et Q-PCR), ELISA.
  * Chimie organique : synthèse de peptides, protections
  * Généralités sur la qualité, méthodes d'optimisations (plans d'expérience)

• Université Lille 1 Sciences Et Technologies

  Villeneuve D'Ascq 2008 - 2012 Licence chimie
  
  mention assez bien

• Lycée Henry Becquerel

  Nangis 2005 - 2008 Bac S
  
  Mention assez bien

Réseau

• Bertrand DEHAINE

• Dorian DUPILET

• Fabien NOYON

• Fabien PAMELARD

• Jordan DEGUINES

• Josette NUKAFU

• Ludivine MARLIER

• Matthieu JAGU