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Claire DUMONT

TOURS

En résumé

Profil : Biologiste spécialisée en immunologie et microbiologie (5 ans d’expérience).
Savoir faire: Développement et mise en œuvre de techniques dans le cadre de projets de recherche en biologie médicale (essais in vitro, in vivo et pré-clinique). Mise en place et veille au respect des règles imposées par l’ANSM et des règles d’hygiènes et sécurité du laboratoire. Gestion du laboratoire (achat, base de données, informatique et formation du personnel).

• COMPETENCES TECHNIQUES

Biologie cellulaire et Immunologie : culture cellulaire, ELISA, purification et conjugaison d’anticorps, test de séroneutralisation, cytométrie en flux, tri cellulaire

Imagerie : ImageStreamX, microscopie à fluorescence (haute résolution, confocale)

Biologie moléculaire et biochimie: clonage, CRISPR-Cas9, transfection, RT, PCR, qPCR, gene reporter assay, WB, CoIP, électrophorèse-2D

Microbiologie : production et purification virale (type 2 et 4), culture parasitaire, titrage, cinétique, identification de micro-organismes

Manipulation animale : Injection, prélèvement organes/sang chez la souris

Informatique : Pack Office, Graphpad Prism, Flowjo, ImageJ

• AUTRES COMPETENCES

Gestion de laboratoire :
- Achat (logiciel Safir)
- Gestion informatique (installation de logiciels, achat de licences)
- Formation du personnel à l’utilisation d’appareils et aux techniques de routine
- Gestion de base de données (Labcollector)

Hygiène et sécurité (H&S) :
- Respect de la réglementation ANSM : manipulation d’échantillons MOTs (gestion et inventaire), révision de procédures
- Rédaction de procédures opératoires pour le bon suivi et l’application des règles H&S

Conception de projet :
- Rédaction de demande d’autorisation d’expérimentation animale et présentation à un comité éthique (CECCAPP)

• FORMATIONS RECENTES

2018 :
- Travail en milieu confiné BSL4 (Laboratoire P4 Jean-Mérieux, Lyon)
- Sauveteurs Secouristes du travail (SOFIS)
- DUI expérimentation animale Niv 1 (Université de Lyon 1)
- Utilisation ImageStreamX MarkII
(AniRA – Cytometry, Lyon)
- Utilisation logiciel PHARE pour la gestion des lignées de souris (AniRA – PBES, Lyon)

2017:
- Utilisation des appareils de cytométrie en flux (AniRA – Cytometry, Lyon)
- Utilisation des microscopes confocales spectral Leica SP5 et Zeiss Inversé LSM800 (LYMIC-PLATIM, Lyon)
- Utilisation de l’appareil de qPCR et du logiciel StepOne (CIRI, Lyon)
- Utilisation du logiciel d’analyse comportementale : Ethovision
- Utilisation microtome (CIRI, Lyon)
- Manipulation de souris zone A1 et A2 (AniRA – PBES, Lyon)

• CENTRES D’INTERETS

Voyage : Asie du sud-est, Océanie, Afrique
3,5 ans de vie en Australie

Nature, environnement : Bénévole au centre de secours pour animaux sauvages CROW (Afrique du sud)

Sport : Randonnée pédestre et équestre, Escalade, Course à pied et Trail (42km)

Mes compétences :
Formation etudiant
Evernote
Anglais
Genotrack
ImageJ
Flowjo
Pack office
Redaction de procedure operationelle permanente
Preparation Audit Environnement Hygiene et Securit
Prelevement rate et ganglions chez la souris
Prism
Electrophorese bidimensionelle
Immunoprecipitation
Transfection
Clonage
Western Blot
CRISPR/Cas9
PCR
Présentation antigène
Culture cellulaire
Fluorescence
Purifiation cellules
Tri cellulaire
Conjugaison anticorps
Purification anticorps
Cytométrie en flux
ELISA
Immunologie
Parasitologie
QPCR
Ethovision
Travail en labo P4
Expérimentation animale
Labcollector
Étude pré-clinique
Test de seroneutralisation
Réglementation ANSM
Gene reporter assay
Éthique
Base de données
Révision de procédure
Stepone
ImageStreamX
Préparation audit
Production et titrage viraux

Entreprises

  • Centre International de Recherche en Infectiologie - Ingénieur d'étude

    2017 - maintenant Laboratoire de Branka Horvat

    Projet : Etude de l’immunobiologie des infections virales, pour le développement de thérapies innovantes (Nipah / Rougeole / HHV-6A).

    Missions principales:

    - Etude du virus Nipah :
    o Caractérisation par techniques biochimiques d’une protéine Non-structurale du virus et identification de ses intéractants et de ces effets sur la voie NF-kB. Production et étude de mutants de la protéine. Localisation de la protéine par immunomarquage.
    o Chargé de suivi du bon déroulement d’un essai pré-clinique chez le primate, pour l’étude d’une thérapie innovante contre le virus. Rédaction de rapport et analyses d’échantillons.
    o Etude du développement de plusieurs souches du virus dans différents lignées cellulaires (humaine, primate, chauve-souris).

    - Etude du virus de la Rougeole : Essai pré-clinique sur des modèles de souris Tg susceptible à l’infection, pour l’étude d’une thérapie innovante. Test de protection conféré par le traitement contre différentes souches du virus, avec des doses et durée de traitement variable.

    - Etude du virus HHV-6A: Etude des effets de l’infection, sur un modèle de souris Tg. Recherche moléculaire et étude de la localisation du virus par immuno-marquage sur coupe de cerveau en paraffine. Analyse de vidéos de suivi comportemental des souris infectées.
  • Bio21 Institute - Melbourne University - Assistante de recherche / Manager de laboratoire

    2014 - 2016 Laboratoire du Prof. Villadangos et Dr. Mintern

    Projet : Conception et optimisation de méthodes innovantes pour l’étude des récepteurs de la cellule dendritique (CD), dans le but de développer des vaccins ciblés.

    Missions principales:

    - Mise au point d’une technique de routine pour étudier les cinétiques d’internalisation de molécules par cytométrie en flux. Utilisation de cette méthode pour le suivi des récepteurs de la CD (purifiées de rates de souris) et de vecteurs à nanoparticules.

    - Mise en œuvre d’une technique de présentation d’antigène pour vérifier l’efficacité de ciblage de récepteur de la CD pour l’activation de la réponse immunitaire chez la souris.

    - Préparation d’échantillons pour l’identification de nouveaux récepteurs à cibler par séquençage à haut débit (NGS) et analyse protéomique (MALDI-TOF), après knock-down de gènes et tri cellulaire.
  • Bio21 institute - Université Melbourne - Australie (Service Biologie moléculaire et Biochimie) - Stagiaire

    2013 - 2013 Laboratoire du Dr. Tilley

    transporteur ABC impliqué dans le trafic de protéines du parasite P.falciparum, agent infectieux du paludisme.

    Mission principale: Caractérisation par techniques biochimiques de la protéine et identification de ses intéractants. Production d’une protéine fusionnée avec la GFP exprimé par les parasites, après transfection en culture de sang humain. Localisation de la protéine et ses intéractants par immunomarquage.

    Superviseur: Leann Tilley / Coralie Millet / Matt Dixon / Con Dogovski
  • MSD animal health - The Netherlands - Stagiaire

    2012 - 2012 Laboratoire du Dr.Moulin

    Mission principale: Optimisation de tests ELISA pour validation et utilisation en routine afin d’étudier des réponses IgA et IFN-γ chez les ruminants après vaccination et infection par le Virus Respiratoire Syncytial Bovin (VRSB). Utilisation de ces méthodes pour évaluer la protection vaccinale de bovins dans le cadre d’une étude clinique.

    Superviseur: Véronique Moulin / Ulrike Schmidt / Mark van Rooij.
  • Service bacteriologie CHRU Trousseau tours - Technicienne de laboratoire

    2011 - 2011 Mission principale: Ensemencer des milieux de culture avec des prélèvements humains pour la recherche de pathogènes. Réalisation d’antibiogrammes.
  • Service parasitologie - Mycologie - Médecine Tropicale, CHRU Bretonneau Tours - Stagiaire

    2011 - 2011 Laboratoire du Prof. Chandenier

    Hôpital Bretonneau (CHRU) – Mycologie (Tours, France)

    Projet: Recherche et caractérisation d’un biomarqueur spécifique à l’Aspergillose pulmonaire invasive ; pour la création d’une technique de diagnostique plus efficace.

    Mission principale: Création par électrophorèse bidimensionnelle et comparaison de profils protéiques de prélèvements (LBA) de rat infectés ou non par le champignon Aspergillus fumigatus.

    Superviseur: Jacques Chandenier / Guillaume Desoubeaux
  • Laboratoire du docteur WATT Chinon - Technicienne de laboratoire

    2010 - 2010 Mission principale: Utilisation, maintenance et calibration de l’appareil de Biochimie (FUSION) pour l’analyse des prélèvements humains (sang).
  • Laboratoire de recherche en parasitologie/mycologie, Rennes - Stagiaire

    2010 - 2010 Laboratoire du Dr. Robert-Gangneux

    Projet: Etude de l’effet de l’incorporation des dérivés furanosides dans la paroi des leishmanies pour la création d’un traitement anti-infectieux conte la Leishmaniose.

    Mission principale: Criblage de molécules à potentiel thérapeutique sur culture de leishmanies.

    Superviseur: Florence Robert-Gangneux / Octavie Rostan
  • INRA Nouzilly Tours - Stagiaire

    2009 - 2009 Laboratoire du Dr. Rodolakis

    Projet: Etude de la réponse immunitaire déclenchée par le vaccin Coxevac contre la fièvre Q chez les chèvres.

    Mission principale: Quantification par ELISA de la réponse cellulaire et humorale sur prélèvements effectués chez la chèvre après vaccination.

    Superviseur: Annie Rodolakis / Denis Cochoneau.

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