Claire DUMONT

En résumé

Entreprises

• Centre International de Recherche en Infectiologie - Ingénieur d'étude

  2017 - maintenant Laboratoire de Branka Horvat
  
  Projet : Etude de l’immunobiologie des infections virales, pour le développement de thérapies innovantes (Nipah / Rougeole / HHV-6A).
  
  Missions principales:
  
  - Etude du virus Nipah :
  o Caractérisation par techniques biochimiques d’une protéine Non-structurale du virus et identification de ses intéractants et de ces effets sur la voie NF-kB. Production et étude de mutants de la protéine. Localisation de la protéine par immunomarquage.
  o Chargé de suivi du bon déroulement d’un essai pré-clinique chez le primate, pour l’étude d’une thérapie innovante contre le virus. Rédaction de rapport et analyses d’échantillons.
  o Etude du développement de plusieurs souches du virus dans différents lignées cellulaires (humaine, primate, chauve-souris).
  
  - Etude du virus de la Rougeole : Essai pré-clinique sur des modèles de souris Tg susceptible à l’infection, pour l’étude d’une thérapie innovante. Test de protection conféré par le traitement contre différentes souches du virus, avec des doses et durée de traitement variable.
  
  - Etude du virus HHV-6A: Etude des effets de l’infection, sur un modèle de souris Tg. Recherche moléculaire et étude de la localisation du virus par immuno-marquage sur coupe de cerveau en paraffine. Analyse de vidéos de suivi comportemental des souris infectées.

• Bio21 Institute - Melbourne University - Assistante de recherche / Manager de laboratoire

  2014 - 2016 Laboratoire du Prof. Villadangos et Dr. Mintern
  
  Projet : Conception et optimisation de méthodes innovantes pour l’étude des récepteurs de la cellule dendritique (CD), dans le but de développer des vaccins ciblés.
  
  Missions principales:
  
  - Mise au point d’une technique de routine pour étudier les cinétiques d’internalisation de molécules par cytométrie en flux. Utilisation de cette méthode pour le suivi des récepteurs de la CD (purifiées de rates de souris) et de vecteurs à nanoparticules.
  
  - Mise en œuvre d’une technique de présentation d’antigène pour vérifier l’efficacité de ciblage de récepteur de la CD pour l’activation de la réponse immunitaire chez la souris.
  
  - Préparation d’échantillons pour l’identification de nouveaux récepteurs à cibler par séquençage à haut débit (NGS) et analyse protéomique (MALDI-TOF), après knock-down de gènes et tri cellulaire.

• Bio21 institute - Université Melbourne - Australie (Service Biologie moléculaire et Biochimie) - Stagiaire

  2013 - 2013 Laboratoire du Dr. Tilley
  
  transporteur ABC impliqué dans le trafic de protéines du parasite P.falciparum, agent infectieux du paludisme.
  
  Mission principale: Caractérisation par techniques biochimiques de la protéine et identification de ses intéractants. Production d’une protéine fusionnée avec la GFP exprimé par les parasites, après transfection en culture de sang humain. Localisation de la protéine et ses intéractants par immunomarquage.
  
  Superviseur: Leann Tilley / Coralie Millet / Matt Dixon / Con Dogovski

• MSD animal health - The Netherlands - Stagiaire

  2012 - 2012 Laboratoire du Dr.Moulin
  
  Mission principale: Optimisation de tests ELISA pour validation et utilisation en routine afin d’étudier des réponses IgA et IFN-γ chez les ruminants après vaccination et infection par le Virus Respiratoire Syncytial Bovin (VRSB). Utilisation de ces méthodes pour évaluer la protection vaccinale de bovins dans le cadre d’une étude clinique.
  
  Superviseur: Véronique Moulin / Ulrike Schmidt / Mark van Rooij.

• Service bacteriologie CHRU Trousseau tours - Technicienne de laboratoire

  2011 - 2011 Mission principale: Ensemencer des milieux de culture avec des prélèvements humains pour la recherche de pathogènes. Réalisation d’antibiogrammes.

• Service parasitologie - Mycologie - Médecine Tropicale, CHRU Bretonneau Tours - Stagiaire

  2011 - 2011 Laboratoire du Prof. Chandenier
  
  Hôpital Bretonneau (CHRU) – Mycologie (Tours, France)
  
  Projet: Recherche et caractérisation d’un biomarqueur spécifique à l’Aspergillose pulmonaire invasive ; pour la création d’une technique de diagnostique plus efficace.
  
  Mission principale: Création par électrophorèse bidimensionnelle et comparaison de profils protéiques de prélèvements (LBA) de rat infectés ou non par le champignon Aspergillus fumigatus.
  
  Superviseur: Jacques Chandenier / Guillaume Desoubeaux

• Laboratoire du docteur WATT Chinon - Technicienne de laboratoire

  2010 - 2010 Mission principale: Utilisation, maintenance et calibration de l’appareil de Biochimie (FUSION) pour l’analyse des prélèvements humains (sang).

• Laboratoire de recherche en parasitologie/mycologie, Rennes - Stagiaire

  2010 - 2010 Laboratoire du Dr. Robert-Gangneux
  
  Projet: Etude de l’effet de l’incorporation des dérivés furanosides dans la paroi des leishmanies pour la création d’un traitement anti-infectieux conte la Leishmaniose.
  
  Mission principale: Criblage de molécules à potentiel thérapeutique sur culture de leishmanies.
  
  Superviseur: Florence Robert-Gangneux / Octavie Rostan

• INRA Nouzilly Tours - Stagiaire

  2009 - 2009 Laboratoire du Dr. Rodolakis
  
  Projet: Etude de la réponse immunitaire déclenchée par le vaccin Coxevac contre la fièvre Q chez les chèvres.
  
  Mission principale: Quantification par ELISA de la réponse cellulaire et humorale sur prélèvements effectués chez la chèvre après vaccination.
  
  Superviseur: Annie Rodolakis / Denis Cochoneau.

Formations

• Université Tours Francois Rabelais - UFR Sciences Et Techniques

  Tours 2010 - 2012 Master 1 - Infectiologie, Vaccinologie

• Université Rennes 1 L3 BCGMP

  Rennes 2009 - 2010 Microbiologie

• Institut Universitaire De Technologie (IUT) - La Rochelle

  La Rochelle 2007 - 2009 DUT Génie Biologique Analyse Biologique et Biochimique
  
  Microbiologie

Réseau

• Aurélien JOTTREAU

• Gwenaëlle MALLOUKA

• Jennifer HETTICH

• Jerome BROSSIER

• Pauline SUDRON

• Thibaud MARIDET