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Cancer Research Technology, Londres
- Assay Development Scientist for Drug Discovery
2012 - 2014
Mission: Développement d’essais biochimiques et biophysiques pour l’identification et la caractérisation d’inhibiteurs des enzymes de déubiquitylation (DUBs); Projet en collaboration avec FORMA therapeutics.
Réalisation:
- Mise en œuvre et interprétations des expériences
- Communication et valorisation des résultats
- Veille scientifique et technologique
- Initier et coordonner l’avancée du projet de recherche avec les collaborateurs internes et externes
- Rédaction de rapports et protocoles
- Développement de tests biochimiques pour criblage à haut débit: Fluorescence, FP, FRET et Luminescence
- Caractérisation des cibles enzymologiques : Km, kcat, activité spécifique
- Méthodes biophysiques pour l’étude des interactions ligand-protéine: ELISA, SPR, differential scanning fluorimetry, Epic, Microscale thermophoresis
- Caractérisation des molécules actives : IC50, KD, profil de sélectivité, Ki, kinact, KI
- Etude des mécanismes d’inhibition : réversibilité, compétition, agrégation
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Aureus-sciences, Paris
- Analyste scientifique
2011 - 2012
Mission:
- Management de la base de données Aureus-Sciences sur les protéases
- Production d'un rapport d’analyse sur les protocoles expérimentaux in vitro et in vivo impliquant les protéases et appliqués à l’oncologie.
Réalisation :
- Sélection et intégration des données, compréhension du secteur, rédaction d'un rapport d’analyse
- Contrôle qualité des données biologiques et chimiques saisies
- Veille bibliographique dans le domaine du Drug Discovery et des Protéases
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Kings College London
- Research associate (postdoc) in lifescience
2010 - 2011
Mission: Optimisation et développement de tests biochimiques, biophysiques et cellulaires pour mesurer la capacité de petites molécules ou peptides à inhiber l’interaction protéine-protéine IgE/FcepsilonRI dans le but d’identifier de nouveaux médicaments contre les allergies.
Realisation : Expression et purification d’immunoglobuline, culture de cellule de mammifère, apprentissage des méthodes d’analyse des complexes protéine-protéine : biochimique (ELISA), biophysiques (SPR, qPCR) et cellulaires (mesure de la libération de facteurs pro-inflammatoires par fluorescence)
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Université d’Orléans
- Doctorat ès Science : Interface Chimie-Biologie : Systèmes moléculaires à visées thérapeutiques
2006 - 2010
Projet : Synthèse et évaluation d’inhibiteurs nouveaux de la protéine kinase Raf-1 impliquée dans le cancer.
Compétences acquises : Synthèse organique multi-étapes de type hétérocyclique (étude du 4-azaindole, réactions de couplage pallado-catalysées, réactions de métallation), Optimisation et dévelopement de tests enzymatiques radioactif (manipulation de l’isotope radioactif 32P) et non radioactif (technologie TR-FRET), approches rationnelles et criblage in silico, synthèse peptidique, (HPLC-UV, RMN)
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Université Paris 11
- Master 2 professionnel: Ingénierie structurale et fonctionnelle des biomolécules
2006 - 2006
Mission : Analyse de l’oligomérisation du prion de levure Ure2p.
Compétences acquises : Expression et purification de protéine, mesures de fluorescence, pontages chimiques, protéolyses, gels SDS-PAGE, analyses MALDI-TOF
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Université Paris 5
- Master 2 recherche : Chimie des sciences du vivant à Paris 5
2005 - 2005
Projet : Synthèse et métabolisation de composés antihistaminiques : étude de la biotransformation de la terfénadine en fexofénadine.
Compétences acquises : Synthèse organique, purification, bioconversion, culture bactérienne, RMN, HPLC-UV, HPLC-Masse
