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Flore VERNIER

Nantes

En résumé

R&D, Études techniques et mises au point, Diagnostic in vitro, Immunologie, Biologie moléculaire et cellulaire, Biochimie, Bibliographie, Rédaction de rapports et procédures en anglais, Management de la Qualité, hygiène et sécurité,

Mes compétences :
Biochimie
Biologie moléculaire et cellulaire
hygiène et sécurité
Management de la qualité
R&D
Industrie pharmaceutique
Gestion de projet
BPL
Immunologie
Développement et validation de méthodes analytique

Entreprises

  • Eurofins / ADME BIOANALYSES - Responsable technique en immunologie

    Nantes 2013 - maintenant
  • DBV Technologies - Chargée Développement Analytique

    Bagneux 2013 - 2013 Missions :
    - Développer et valider les méthodes analytiques selon les normes ICH (ELISA, dosages spectrophotomètriques, SDS-PAGE)
    - Effectuer les études de caractérisation et stabilité des matières premières et produits finis.
    - Rédiger les procédures, rapports d’analyses et protocoles d’études en anglais.
  • Neovacs - Ingénieur R&D

    2011 - 2012 Missions :
    - Caractériser la réponse immune humorale, par isotypage et évaluation de la spécificité
    - Effectuer les recherches bibliographiques
    - Mettre au point et optimiser les protocoles techniques (Immuno-assays : ELISA, Western Blot ; Culture cellulaire de lignées et primaire, mesure de l'activité neutralisante d'anticorps par MDBK/VSV et L929/EMCV bioassays), participer au manufacturing de l'IFN-K, gestion des échantillons de l'étude clinique.
    - Rédiger les rapports d’études et procédures en anglais (formation MATRIX).
  • Institut Cochin, U1016 : Biologie Cellulaire et Interactions Hôtes Pathogènes, Intéractions Hôte-VIH - Ingénieur d'étude en biologie

    2011 - 2011 Missions :

    - Conduire l’étude d’intéraction protéines-protéines dans la signalisation cellulaire liée au VIH
    - Effectuer les recherches bibliographiques
    - Mettre au point et optimiser les protocoles (cultures cellulaires, établissement d’une lignée stable, SiRNA, Clonage, Western Blot, immunofluorescence, FACS et infection).
    - Répondre aux règles d’Hygiène et Sécurité en laboratoire de niveau P3 et traçabilité des résultats
  • Institut Cochin, U1016 : Gènes, Nutriments et Fer - Ingénieur d'étude en biologie

    2011 - 2011 Missions :

    Participer à l’étude des marqueurs de processus inflammatoires liés au métabolisme du fer dans les adipocytes murins (Cultures primaires, étude transcriptomique par RT-qPCR, Western Blot et immunocytochimie).
  • INSERM U767 grossesse normale et pathologique, Prem'up - Ingénieur d'étude en biologie

    2009 - 2010 Missions : Prématurité et poumons

    - Coordonner l'évaluation de la production de cytokines par les cellules épithéliales pulmonaires après stimulation des récepteurs de l'immunité (TLRs)
    - Effectuer les recherches bibliographiques
    - Gérer et optimiser les tests cellulaires (cultures de lignées et primaires), les immuno-assays et l’étude transcriptomique (ELISA, RT-PCR, qPCR sybr green, Western Blot, Immunofluorescence)
  • Sanofi-Aventis - Apprentie ingénieur R&D

    Paris 2008 - 2009 - Etudes enzymologiques (activité, Km, Vmax, réversibilité), test d’inhibiteurs de l’activité enzymatique et de la prolifération cellulaire.
    - Gérer les cultures cellulaires, traitement des lysats cellulaires et tissulaires et mise au point d’immuno-assays (ELISA, Western Blot)
    - Répondre au système de Qualité, Hygiène, Sécurité et traçabilité des résultats.
    - Initiation aux techniques de puces à ADN (Affimetrix), de Mesoscale discovery et LC-MS
  • University College London (UCL) - Stagiaire assistant ingénieur en biologie

    2008 - 2008
  • CEA-INSERM - Stagiaire assistant ingénieur en biologie

    2007 - 2007
  • INSERM - Stagiaire technienne supérieure de recherche

    PARIS 13 2006 - 2006

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