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Gaëlle AUGUSTE

PARIS

En résumé

Je suis actuellement en Doctorat des Universités au sein de l'UMR-S 769 de Châtenay-Malabry.

J'ai auparavant exercée en temps que technicienne supérieure en pharmacologie et électrophysiologie à l'Institut de Recherche Servier, où j'ai participé à une étude en électrophysiologie cardiaque.

Je suis diplômée d'un master professionnel intitulé Génie Cellulaire, Moléculaire et Pharmacologique depuis septembre 2010.

J'ai pu appréhender divers univers (recherche universitaire et industrielle) lors de mes stages ; mon cursus et l'expérience acquise sur le terrain me permettent de disposer des compétences suivantes :

Pratique expérimentale :
In vitro : Culture cellulaire (lignées primaires - cardiomyocytes, VSMC d'aorta, human keratinocytes, Tabac et Arabidopsis-, lignées immortelles - CHO, HaCaT, HEK-), préparation de cultures primaires, tests cellulaires (bioluminescence, migration, prolifération, cytotoxicité et différenciation) et transformation bactérienne.

Ex vivo : Travail sur organe isolé (Cœur, intestin, trachée, bronche), Chambre de Ussing.

Techniques maîtrisées :
Electrophysiologie : patch clamp, voltage clamp en simple et double électrode.
Biologie moléculaire et cellulaire (transfection, ICC, Western Blot, RT-qPCR, Immunoprécipitation, tests ELISA et Luminex)
base en imagerie confocale et conventionnelle calcique.
Base en cytométrie de flux.

In vivo : Base sur tests comportementaux sur souris, mesure de constantes physiologiques (respiration, salivation, excrétion urinaire et sécrétion biliaire).


Compétences transversales :
Gestion de projet (rédaction cahier des charges, mise en place rétroplanning, gestion d'équipe), mise en place de normes qualités dans un laboratoire, notions sur l'étude de brevetabilité.

Mes compétences :
Biologie moléculaire
Biologie cellulaire
Physiologie
Gestion de projet

Entreprises

  • Inserm U 769 - Etudiante en Doctorat des Universités

    2011 - maintenant J'étudie lors de ma thèse de doctorat le rôle de la signalisation minéralocorticoïde sur les canaux calciques de type L au sein du cardiomyocyte.
    Pour ce faire, je travaille sur des cardiomyocytes isolés en culture de rats nouveaux-nés. J'ai pu réaliser des études de promoteurs avec la technique du gène rapporteur, des études de protéines, des ARN messagers, de translocation nucléaire.

    J'ai travaillé en collaboration avec des membres d'une autre équipe INSERM sur ce projet.
    J'ai participé à des congrès scientifiques nationaux, et européens où j'ai pu présenter mes travaux (communication poster et conférence) et j'ai remporté un prix jury de Communication Poster lors du 36th meeting of the European Working Group on Cardiac Cellular Electrophysiology EWGCCE.

    J'ai également lors de ma thèse pu effectuer un stage d'échange au Mexique au sein du département de Biochimie au Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional CINVESTAV-IPN afin d'étudier le rôle de la signalisation minéralocorticoïde sur le calcium intracellulaire au sein des myocytes d'aorte du muscle lisse vasculaire.

    Pour ce faire, j'ai dû mettre en pratique et acquérir les compétences suivantes :
    - culture cellulaire : cardiomyocytes, VSMC d'aorte.
    - techniques de biologie moléculaire/biochimie : transfection, test de bioluminescence, Western Blot, Immunoprécipitations, avec de la RT-qPCR (SybrGreen), immunocymarquage, transfection, imagerie confocale, étude de colocalisation.
    - Communication : orale et écrite, rédaction

    En outre, lors de ces trois années de thèse, j'ai pu effectuer un service de monitorat en dispensant des travaux dirigés de Physiologie et de Neurophysiologie Générale a des étudiants en seconde année du cursus de pharmacie (64 heures de présentiel/an).
    J'ai suivi au sein de l'Université des formations spécifiques dédiées me permettant d'assurer ces fonctions
    Pour ce faire, j'ai dû mettre en pratique les compétences suivantes:
    Préparation de cours, utilisation de logiciels dédiés, aptitude à la communication didactique et pédagogique, préparation de questions d'examen et corrections de copies.

  • Institut de Recherche Servier - Techicienne Supérieur en Electrophysiologie et Pharmacologie

    2011 - 2011 Je participe à une étude en électrophysiologie cardiologie.
    Je réalise des tests de screening en patch clamp sur cellules CHO.

  • Pierre Fabre Dermo-Cosmétique - Ingénieur en biologie stagiaire

    Castres 2010 - maintenant Stagiaire au sein du service de Pharmacologie Cellulaire de Toulouse, ma thématique de recherche était l'Evaluation d’Actifs dans la Cicatrisation Cutanée.
    J'ai pu, au quotidien, mettre en pratique des techniques de biologie moléculaire, cellulaire et de biochimie, ainsi que de culture cellulaire, telles que :
    - Tests cellulaires de prolifération, de migration, de toxicité et de différenciation
    - Tests ELISA
    - Technologie xMAP en Luminex (Quantification protéique)
    - QuantiGene (Quantification ARNm)
    Culture cellulaire de kératinocytes : primoculture à partir d’explants humains et lignée immortelle.

  • Université de Poitiers - Etudiante

    Poitiers 2009 - 2010 Au cours de mon cursus universitaire, lors d’un projet en autonomie de 3 mois au sein du Pôle Biologie Santé de l’Université, j’ai pu réaliser différentes techniques sur rats :
    - de mesure in-vivo : suivi de la respiration
    - de mesure ex-vivo : technique de l’organe isolé (bronches et trachée)
    J'ai également pu développer des compétences en gestion de projet en étant chef de ce projet d’étude pharmacologique :
    - mise en place d’un rétro-planning
    - d’une étude budgétaire
    - tenue de réunions hebdomadaires de reporting en anglais
    - mise en place et respect des BPL au sein du projet
    (Utilisation MS Project)

  • EA 3514, Laboratoire d’Electrophysiologie des Membranes Végétales - Stagiaire

    2009 - 2009 J'ai effectué au sein du Laboratoire d’Electrophysiologie des Membranes Végétales de l'Université de Paris 7 à Jussieu un stage de 3 mois sur la thématique "Voie de Signalisation Cellulaire Végétale Engagée en Réponse aux Nanoparticules" au cours duquel j'ai pu pratiquer :
    - la culture cellulaire en suspension (Arabidopsis et Tabac)
    - l’électrophysiologie (voltage clamp à une électrode)
    - RT-PCR
    - Technique de fluorimétrie (suivi des influx calcique), de luminométrie (suivi des EORs)
    - Technique de quantification de la mortalité cellulaire

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