Julie FREDONNET

En résumé

Entreprises

• TWB - Ingénieur d'études

  2014 - maintenant Projet Synthacs : développement en système microbien d'une voie métabolique synthétique conduisant à la production de molécules chimiques à forte valeur ajoutée à partir de ressources carbonées renouvelables.
  
  Ingénierie génétique : mutagenèse dirigée et/ou aléatoire, clonage.
  
  Ingénierie métabolique et enzymatique : production et purification d'enzymes recombinantes; caractérisation enzymatique.
  

• Institut des Technologies Avancées en sciences du Vivant (ITAV)- Toulouse - Ingénieur Bionanotechnologies

  2012 - 2014 Missions:
  * Mise au point d'un outil de diagnostic moléculaire in vitro (puces à ADN) utilisant les derniers développements en nanotechnologie:
  - Application au pronostic du cancer du sein
  - Application à la détection de risques alimentaires.
  * Etude topographique et mécanique des cornéocytes par microscopie à force atomique:
  -Application à une maladie dermatologique: la dermatite atopique.

• CEA - Ingénieur Biotechnologies

  PARIS 2011 - 2012 Mission: Etude de faisabilité visant à déterminer l’adaptabilité de la PCR isotherme à une application terrain pour la détection et l'identification d'agents toxiques biologiques.
  Collaboration avec NBC-Sys (St-Chamond)
  Techniques employées: culture bactérienne en P2, extraction d'ADN, qPCR, RT-qPCR, PCR isotherme, modélisation de sondes et d'amorces.

• Veolia Environnement-Centre de Recherche sur l'Eau (Maison-Laffitte) - Ingénieur d'études R&D stagiaire

  2010 - 2010 Mission: Mise au point d’une méthode de quantification des bactéries productrices de polyhydroxyalcanoates (utilisés pour la production de plastiques biodégradables) issues de boues activées par PCR quantitative en temps réel et application au suivi d’un pilote.
  Techniques employées: Alignements de séquences, modélisation de sondes et d'amorces, extraction d'ADN, qPCR et RT-PCR, DGGE, clonage et initiation aux procédés de bioréaction (SBR et CSTR).

• UMR CNRS 6101-Faculté de Médecine - Ingénieur d'études R&D stagiaire

  2009 - 2009 Mission: Identification et étude du rôle de Pax-5 et de ses isoformes sur la différenciation des lymphocytes B.
  Techniques employées: Extraction ADN, PCR, qPCR, RT-PCR, construction de cartes de restriction, clonage, cultures cellulaires, cultures bactériennes, électroporation, lipofection et cytométrie en flux.

• EA 3842- Faculté de Médecine - Assitant Ingénieur R&D stagiaire

  2008 - 2008 Mission: Étude de l’expression de Bcl-2, protéine anti-apoptotique, dans les lignées de cancer colorectal.
  Techniques employées: Cultures cellulaires, Western Blot, ELISA, cytométrie en flux, immunofluorescence.

Formations

• Université De Limoges Faculté Des Sciences Et Techniques

  Limoges 2008 - 2010 Master Professionnel Biotechnologies
  
  Mention Assez-Bien

• Université De Limoges Faculté Des Sciences Et Techniques

  Limoges 2004 - 2008 Licence Sciences de la Vie et de la Santé
  
  Mention Bien

• Lycée Jean Giraudoux

  Bellac 2002 - 2004 Baccalauréat Scientifique

Réseau

• Camille PRIETO

• Cécile DENIS

• Childérick SEVERAC

• Doudoue DUPAGE

• Elodie FAUGERON

• Emeline LANDAS

• Fabien LOOSDREGT

• Guillaume MORIN

• Karen DUMAS

• Richard CAILLAUD