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Julie FREDONNET

TOULOUSE

En résumé

Mes compétences :
Rédaction de cahiers des charges
Biologie cellulaire
Rédaction de synthèses bibliographiques
Microscopie à force atomique
Rédaction d'articles scientifiques
Biopuces
Biologie moléculaire
Encadrement de stagiaires
Réactivité
Travail en équipe
Biotechnologies
Autonomie
Recherche et développement
Transmission de savoirs
Polyvalence
Adaptabilité
Rigueur
Responsabilité

Entreprises

  • TWB - Ingénieur d'études

    2014 - maintenant Projet Synthacs : développement en système microbien d'une voie métabolique synthétique conduisant à la production de molécules chimiques à forte valeur ajoutée à partir de ressources carbonées renouvelables.

    Ingénierie génétique : mutagenèse dirigée et/ou aléatoire, clonage.

    Ingénierie métabolique et enzymatique : production et purification d'enzymes recombinantes; caractérisation enzymatique.
  • Institut des Technologies Avancées en sciences du Vivant (ITAV)- Toulouse - Ingénieur Bionanotechnologies

    2012 - 2014 Missions:
    * Mise au point d'un outil de diagnostic moléculaire in vitro (puces à ADN) utilisant les derniers développements en nanotechnologie:
    - Application au pronostic du cancer du sein
    - Application à la détection de risques alimentaires.
    * Etude topographique et mécanique des cornéocytes par microscopie à force atomique:
    -Application à une maladie dermatologique: la dermatite atopique.
  • CEA - Ingénieur Biotechnologies

    PARIS 2011 - 2012 Mission: Etude de faisabilité visant à déterminer l’adaptabilité de la PCR isotherme à une application terrain pour la détection et l'identification d'agents toxiques biologiques.
    Collaboration avec NBC-Sys (St-Chamond)
    Techniques employées: culture bactérienne en P2, extraction d'ADN, qPCR, RT-qPCR, PCR isotherme, modélisation de sondes et d'amorces.
  • Veolia Environnement-Centre de Recherche sur l'Eau (Maison-Laffitte) - Ingénieur d'études R&D stagiaire

    2010 - 2010 Mission: Mise au point d’une méthode de quantification des bactéries productrices de polyhydroxyalcanoates (utilisés pour la production de plastiques biodégradables) issues de boues activées par PCR quantitative en temps réel et application au suivi d’un pilote.
    Techniques employées: Alignements de séquences, modélisation de sondes et d'amorces, extraction d'ADN, qPCR et RT-PCR, DGGE, clonage et initiation aux procédés de bioréaction (SBR et CSTR).
  • UMR CNRS 6101-Faculté de Médecine - Ingénieur d'études R&D stagiaire

    2009 - 2009 Mission: Identification et étude du rôle de Pax-5 et de ses isoformes sur la différenciation des lymphocytes B.
    Techniques employées: Extraction ADN, PCR, qPCR, RT-PCR, construction de cartes de restriction, clonage, cultures cellulaires, cultures bactériennes, électroporation, lipofection et cytométrie en flux.
  • EA 3842- Faculté de Médecine - Assitant Ingénieur R&D stagiaire

    2008 - 2008 Mission: Étude de l’expression de Bcl-2, protéine anti-apoptotique, dans les lignées de cancer colorectal.
    Techniques employées: Cultures cellulaires, Western Blot, ELISA, cytométrie en flux, immunofluorescence.

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