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Kaouther DRIDI GRANDSIRE SANNIER

METZ

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Forte d’une expérience dans le domaine de la science et notamment dans la recherche fondamentale en Biochimie, Enzymologie et Toxicologie, j’ai entrepris un changement de carrière vers la recherche clinique. Après une formation d’Attaché de Recherche Clinique chez Mediaxe Formation, où j’ai acquis les diverses compétences nécessaires au métier d’ARC en accord avec la réglementation en vigueur (ICH-GCP), je suis actuellement à la recherche d’un stage en région Lorraine, Bouche du Rhône et/ou du Var, de quelques mois (de 2 à 4mois) pour pouvoir mettre en application mes acquis et consolider mes connaissances.

Mes compétences :
Dichroisme circulaire
Biologie cellulaire
Biologie structurale
Prise de parole
biochimie
Spectrométrie de masse
Résonance magnétique nucléaire
Communication écrite
Communication orale
Biologie moléculaire

Entreprises

  • Université de Pavie - Assistante de recherche

    2014 - 2016

  • Aix-Marseille Université - Ingénieure d'études

    Marseille 2012 - 2013 Responsabilités : expression et purification de lipases virale et “patatin-like” issus des virus infectant les micro-algues: Ostreococcus marinus et Ostreococcus lauri. Analyse et comparaison des séquences de gènes recombinant, présentation des résultats, gestion des stocks du laboratoire, rangement et commande.
    - Méthodes employées : clonage par des enzymes de restriction, préparation et purification de l'ADN recombinant, expression chez Pichia pastoris, extraction des protéines « membranaires » par des détergents et tests enzymatiques (technique du pHstat, détection d'activité via Fluorescence BODIPY®).

  • CNRS - Doctorante

    Paris 2010 - 2012 expression, production, purification, caractérisation structurale et tests d'activités des protéines apparentées aux lipases pancréatiques chez les larves d'Epiphyas postvittana (EpLIPs). Analyse et comparaison des séquences de gènes recombinant, rédaction d'articles, présentation des résultats, gestion des stocks du laboratoire, rangement et commande.
    clonage par des enzymes de restriction et par recombinaison homologues, préparation et purification de l'ADN recombinant, expression chez Pichia pastoris, Escherichia coli et/ou cellules d'insectes (Sf9) infectées par Baculovirus recombinant, purification de protéines (Chromatographies d'Affinité, d'exclusion et/ou échangeuse d'ions); repliement de la structure tertiaire des protéines par méthodes chimiques; modélisation 3D des cibles et études structurales (notion de Docking, Vina, autodock), Dichroïsme Circulaire, Infra-rouge (FTIR), préparation des échantillons, tir et analyses des résultats de MALDI-TOF; et tests enzymatiques (technique du pHstat, détection d'activité via Fluorescence BODIPY®).

  • Ecole d'ingénieurs universitaire - Polytech marseille- Luminy, France - Professeur assistante

    2010 - 2010 Travaux pratiques en bio-informatique(Pymol) et biochimie structurale

  • Université de la Méditerranée, Département des Sciences, Marseille Luminy, France - Professeur Assistante

    2010 - 2010 Travaux dirigés en biochimie pour étudiant licence 1ere et 2eme année

  • AFMB- Marseille, Luminy, France - Doctorante en Biochimie structurale

    2009 - 2010 Responsabilités : expression, production et purification des domaines intracellulaires des PeptidoGlycan Recognition Protein family (PGRP-LC and PGRP-LE). Analyse et comparaison des séquences de gènes recombinant, construction de plasmides, présentation des résultats, gestion des stocks du laboratoire, rangement et commande.
    - Méthodes employées : clonage par des enzymes de restriction et/ou par recombinaison homologues, préparation et purification de l'ADN recombinant, expression chez Escherichia coli et/ou cellules d'insectes (S2), purification de protéines/ peptides (Chromatographies d'Affinité, d'exclusion et/ou échangeuse d'ions, HPLC).

  • AFMB - Master 2eme

    2009 - 2009 Responsabilités : Résolution de la structure de la D-Mca par RMN et caractérisation structurale (études des zones de fixation au récepteur RyR, études de thermostabilité...). Rédaction d'articles, présentation des résultats, gestion des stocks du laboratoire, rangement et commande.
    - Méthodes employées : RMN homonucléaire et Dichroïsme Circulaire.

  • AFMB-Marseille, Luminy, France - Master 1ere année

    2008 - 2008 Responsabilités : Expression périplasmique en milieu minimum marqué N15 et purification de XcpT pour les études de dynamique moléculaire par RMN. Présentation des résultats, gestion des stocks du laboratoire, rangement et commande.
    - Méthodes employées : RMN hétéronucléaire (temps de relaxation T1, T2 et HéteroNOE.)

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