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Marion TANGUY

PARIS 13

En résumé

En recherche d'un poste d'Ingénieur d'études en CDI dans une entreprise pharmaceutique/biotechnologie ou un laboratoire de recherche. Je suis dynamique, rigoureuse et organisée. Je suis passionnée par l'immunologie et la virologie.

Diplômé Master 2 Biologie Moléculaire et Cellulaire, Spécialité Immunotechnologies et Biothérapies

Compétences techniques:
- qPCR
- RT-PCR
- Cytométrie en flux (cellules et microvesicules)
- Culture cellulaire en milieu liquide et en milieu semi-solide (méthylcellulose) : cellules primaires (neurones, cellules musculaires, lymphocytes T, cellules NK, monocytes différienciés en macrophages)
- Travail sur le virus de la rage : test d'infection, extraction d'ARN
- Extraction d'ARN par la méthode phénol/chloroforme ou grâce à une colonne d'affinité
- Extraction de protéines
- Western Blot (gels commerciales précoulés et fabrication de gels maison)
- Immunofluorescence et immunohistochimie
- Manipulation en laboratoire P2 et P3

Qualités:
- Autonome
- Esprit d'équipe et d'initiative
- Rigueur scientifique
- Organisée
- Motivée
- Curieuse

Mes compétences :
Recherche
Ingénieur d'études
GMP
Travail en équipe
Immunologie
QPCR
Dynamique

Entreprises

  • Inserm U970 - Ingénieur d'études

    PARIS 13 2015 - 2018 Techniques :
    - ELISA
    - Cytométrie en flux sur plasma : marquage d'antigène présent sur des microvésicules
    - Manipulation de plasmas humains et gestion des prélèvements de plusieurs centaines de patients
    - Travail sur la souris : injection intrapéritonéale, gavage, sacrifice, prélévement des différentes organes
    - Extraction d'ARN et d'ADN
    - RT-PCR et qPCR
    - Extraction de protéines et western Blot
    - Immunohistochimie
    - Study-Coordinator pour un essai clinique de phase III sur le site de Beaujon

  • Institut Pasteur - Technicienne supérieur de laboratoire

    Paris 2013 - 2015 Projet: Étude de la variabilité génétique au sein des populations de virus de la rage et adaptation à l’hôte

    Techniques :
    - Culture cellulaire : lignées adhérentes et cellules primaires
    - Récupération, mise en culture et congélation de cellules primaires:
    - Dissection de fœtus de chien (stade E38-40) et de renard (différents stades) afin de récupérer des neurones
    - Digestion de muscles de chien et de renard afin de récupérer les cellules satellites et de les différencier en myoblastes puis en myotubes.
    - Mise en culture de prélèvements de peau de chien et de renards
    - Manipulation en laboratoire de niveau 3
    - Infection de cellules (lignées et cellules primaires) par différentes souche du virus de la rage
    - Titrage des virus
    - PCR
    - Immunofluorescence

    Autres:
    - Mise au point et rédaction de protocoles
    - Mise en forme, Interprétation et Présentation des résultats
    - Participation à la vie du laboratoire : gestion des commandes ; entretien des matériels…
    - Recherches bibliographiques

  • LFB Biotechnologies - Technicienne supérieur de laboratoire de recherche

    2012 - 2013 Secteur de Caractérisation Biologique et fonctionnelle des anticorps monoclonaux
    -Mise au point et réalisation de tests biologiques en autonomie
    -Mise en forme des résultats
    -Rédaction de rapport de recherche
    -Participation aux réunions projets et d’unités.
    -Compréhension de l’anglais écrit et oral

    Techniques maîtrisées:
    - Purification de populations cellulaires (Cellules progénitrices CD34+, NK, Lymphocyte T, monocytes)à partir de prévélement de moelle osseuse et de sang périphérique
    - Cytométrie en flux (marquage intracellulaire et antigène de surface)
    - Test de prolifération en MTS
    - Culture cellulaire (lignée adhérentes et en suspension)
    - Mesure de l'activité complément des anticorps
    - Dosage ELISA

  • Inserm UMR-S-940 - Ingénieur d'études

    2011 - 2011 Stage 8 mois
    Sujet : "Caractérisation des voies activées par la molécule CD44 suite au traitement par un anticorps anti-CD44 dans des cellules de leucémies aiguës myéloïdes.

    Lignées étudiées : KG1a, HL40, NB4, THP1 (4 lignées dérivées de cellules de pateints atteints de leucémie aigues myéloïdes LAM)

    Etudes précédentes : aprés traitement de souris atteints d'une LAM avec un anticorps anti-CD44, on observe une diminution du nombre de cellules souches leucémiques et une diminution de l'expression de Bmi-1, géne impliqué dans l'autorenouvellement

    But de mon stage : confirmer in vitro les études effectuées chez la souris

    Déroulement:
    - Trouver la concentration optimun de cellules et d'anticorps
    - Traitement des 4 lignées par l'anticorps et observation des résultats par PCRq, cytométrie en flxu et western blot

    Résultats : confirmation in vitro des résultats observés chez la souris

    Techniques :
    - Extraction d'ARN et de protéines
    - Reverse transcriptase
    - qPCR
    - Western Blot
    - Cytométrie en flux

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