Menu

Amandine CHEFSON

MONTREAL

En résumé

Apres avoir obtenu un diplome d'ingenieur chimiste de l'ENSCT (maintenant ENSIACET) en 2003, et un Master of Science en chimie a l'universite McGill (Montreal) en 2006, je travaille actuellement en recherche chez Merck Frosst (Montreal), au sein du groupe DMPK (Drug Metabolism and Pharmacokinetics).

Mon expérience : chimie bioanalytique, métabolisme.

Essais in vitro:
- Inhibition des enzymes P450 (compétitive, irréversible)
- Fraction libre dans le plasma ou les microsomes (dialyse, ultracentrifugation)
- Stabilité métabolique et clairance intrinsèque (incubations microsomales ou dans les hépatocytes)
- Identification d'intermédiaires réactif par incubation avec des agents trappants (CN, GSH...)
- Incubations avec UGTs, SULTs
-
- Automatisation des essais sur Biomek2000 puis sur Hamilton Star (programmation de méthodes, validation)

Analytique:
- LC/MS/MS: développement de méthodes, identification de métabolites
- 3 années d’expérience en HPLC (détection UV et fluorescence), spectroscopie UV-visible, et spectroscopie de fluorescence
- Développement de méthodes analytiques sur HPLC
- Dosage de métabolites (réactions in vitro avec des enzymes P450 humaines purifiées, des microsomes, des hepatocytes) par HPLC, UPLC ou LC/MS/MS
- Techniques d’extractions en phase solide (SPE), en phase liquide (LLE), et la précipitation de protéines (PP)
- Purification de composés par HPLC semi-préparative et collecteur de fractions


Compétences en Informatique:
- Windows 95, 98, NT et XP – Suite Microsoft Office: Word, Excel, Powerpoint
- Logiciels de chromatographie : Agilent Chemstation, Analyst, Millenium, Masslynx, Metabolynx
- Automatisation: Hamilton Star Vector
- Autres : ChemDraw, GraphPad prism, SoftMax pro, SciFinder

Langues : bilingue anglais/français

Mes compétences :
Biochimie
Chimie
HPLC
metabolisme
Pharmacocinétique
Toulouse
UPLC

Entreprises

  • Inception Sciences Canada - Research Scientist I (DMPK)

    2016 - maintenant

  • Plateforme de Biopharmacie - Agente de Recherche - Coordinatrice

    2011 - 2016

  • Merck Frosst - Research Scientist

    2007 - 2010 Bioanalyste au département DMPK (Drug Metabolism and PharmacoKinetics)
    - Developpement de méthodes LC/MS/MS
    - Quantification de métabolites dans des incubations in vitro (microsomes ou hépatocytes humains ou animaux) par UPLC-UV-FL ou LC/MS/MS
    - Quantification de métabolites dans des études in vivo chez le rat, la souris, le singe ou le chien (plasma, bile, foie, reins, cerveaux)
    - Plasma Protein Binding
    - Covalent binding

  • McGill University - Assistante de Recherche

    2006 - 2007

  • McGill University - Master of Science

    2004 - 2006 Projet de Master: (chimie bio-organique)
    Etude de l'activite des enzymes P450 en solvent organique.
    Remplacement des co-facteurs naturels par des donneurs de peroxide d'hydrogene ou des peroxides organiques.
    Optimization des conditions de lyophilization.
    Analyze des produits formes par HPLC et LC-MS.

    Demonstrateur en travaux-pratiques de chimie analytique:
    surveillance de TP, correction de rapports et de cahiers de laboratoire.

  • IRD et Universite de la Nouvelle-Caledonie - Stagiaire de fin d'etudes

    2003 - 2003 Projet de stage:
    Extraction et purification d'antibiotiques a partir des actinomycetes des sols ultramafiques de Nouvelle-Caledonie.
    Culture des bacteries.
    Extraction dans differents solvents organiques.
    Purification sur colonne par bioguidage.
    Purification par HPLC

  • Rhodia Pont-De-Claix - Stagiaire

    2002 - 2002 Atelier de production du TDI (toluène Diisocyanate), élaboration de fiches securité concernant les différents produits chimiques de l’atelier et les procédures d’urgence.

  • University of Texas at Austin - Etudiante en echange, assistant chercheur

    2002 - 2003 Programme d'echange, specialisation en biochimie.

    Projets de recherche au departement de biochimie:

    - Utilisation de la fluorescence et de l’anisotropie pour évaluer le repliement de protéines sur le ribosome, et pour tester l’intéraction de protéines avec le ARNt.

    - Expression et isolation du domaine (G+C) de la protéine IF2 (Initiation Factor 2).

    Expression et purification de protéines de fusion
    Electrophorèses (SDS-PAGE, agarose)
    Quantification de protéines (Méthodes de Bradford et Lowry)
    Réaction de polymérisation en chaîne (RPC)
    Techniques immunologiques (ELISA, Western Blot)
    Spectroscopie de fluorescence, anisotropie
    Marquage de protéines par un tag fluorescent
    Compteur scintillation, phosphorimager

  • European Synchrotron Radiation Facility - Stagiaire

    2001 - 2001 Suivi de 3 semaines de CDD. Etude et amélioration du réseau de récupération d’hélium.

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

Annuaire des membres :