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Armelle MELET

PARIS

En résumé

Mes compétences :
Culture cellulaire
Biologie moléculaire
Biochimie
Enseignement universitaire
Expression et purification de protéines recombinan

Entreprises

  • Institut de Pharmacologie et de Biologie structurale, Toulouse - Chercheur en convention d'accueil

    2013 - 2015 Mise au point d'une méthode de quantification relative de deux isoformes de l'ubiquitine ligase ASB2 au cours du développement cardiaque chez la souris
    - par RT-qPCR (ARNm)
    - par MRM/spectrométrie de masse (protéine), en collaboration avec Dr Sandrine Uttenweiler
  • Université Paris Descartes - Enseignant-Chercheur en Biochimie et Biologie moléculaire

    Paris 2006 - maintenant Equipe JP. Herbeuval (2017-):
    - Etude de la modulation de l'activation virale des pDC par les polyamines
    techniques: HPLC, FACS, Western quantitatif (Odyssey, LI-COR), tests cellulaires PBMC et pDC
    - Recherche d'inhibiteurs de l'interaction TRAIL-DR5
    techniques: purification de hTRAIL recombinant exprimé dans E. coli, tests d'inhibiteurs de l'interaction TRAIL-DR5


    Equipe E. Galardon/D.Padovani (2015-2017): Développement d'une nouvelle méthode de dosage d'H2S dans les échantillons biologiques
    - Purification de l'hémoglobine recombinante HbI de Lucina pectinata exprimée dans E.coli
    (techniques: biologie moléculaire, culture bactérienne, FPLC)
    - Greffage sur électrode pour dosage en électrochimie (Thèse Martin Dulac)


    Equipe I. Artaud (2006-2011): étude des méthionine aminopeptidases comme cibles thérapeutiques
    - Production de protéines recombinantes dans E.coli (biologie moléculaire, culture bactérienne)
    - Purification de protéines (chromatographies d'affinité NiNTA, GSH-sepharose, échangeuses d'ions, exclusion sur gel, FPLC)
    - Tests enzymatiques, screening d'inhibiteurs (HPLC, spectroscopie UV-visible, fluorescence)
  • Beth Israel Deaconess Medical Center, Harvard Medical School, Boston (USA) - Chercheur post-doctorant

    2004 - 2006 Equipe R. Khosravi-Far: étude de la régulation par le système ubiquitine-protéasome du facteur de transcription FOXO3a dans les cellules tumorales, recherche de nouveaux partenaires d'interaction par une approche de protéomique

    techniques: biologie moléculaire, RTqPCR, culture cellulaire, SDS-PAGE, western blot, immunoprécipitations, siRNA
  • Université Paris 5 - Doctorant

    1999 - 2004 Equipe Daniel Mansuy: étude par mutagenèse dirigée de la topologie des sites actifs et des spécificités de substrat des cytochromes P450 2C9 et 2C8 humains
    techniques: biologie moléculaire, expression des P450 dans la levure, purification de la fraction microsomale, tests enzymatiques (HPLC)

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