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Dieynaba BARRY

ILE DE FRANCE

En résumé

Mes compétences :
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Entreprises

  • Laboratoire de Chimie et Microbiologie de l’Eau (LCME) CNRS UMR 6008 à Poitiers - Stagiaire

    maintenant PROJET:Etude de la transduction du signal au cours de l’enkystement des amibes

    Réalisation 1 : Synthèse bibliographique
    Réalisation 2, mise en place de protocoles
    Réalisation 3 planifier et gérer un projet
    Réalisation 4 Etude et interprétations de résultats, poser et vérifier des hypothèses
    Etude bibliographique
    Synthèse bibliographique
    Etude de la voie des MAPKinases particulièrement aux récepteurs transmembranaires à activités tyrosine kinase par utilisation des inhibiteurs spécifiques de cette voie
    Culture cellulaire, induction de l’enkystement en présence ou absence d’inhibiteur
    Marquage des kystes au rouge Congo
    Détermination des pourcentages de kystes par cytométrie en flux
    Etude de l’expression et de la localisation cellulaire des protéines kinases impliquées
    Culture cellulaire, induction de l’enkystement en présence ou absence d’inhibiteur
    Marquages avec les anticorps spécifiques des kinases étudié
    Environnement technique
    Elaboration d’un protocole de manipulation
    Optimisation des méthodes
    Cytométrie en flux
    Immunofluorescence indirete
  • Institut de Physiologie et de Biologie Cellulaires (IPBC) UMP CNRS 6187 Poitiers - Stagiaire

    maintenant Sujet: Etude de l’impact des associations de protéines CFTR mutées

    Utilisation de plasmides mutés déjà élaborés au laboratoire par mutagenèse dirigée
    Extraction de l’ADN plasmidique permettra la réalisation de la PCR
    Transfection des cellules Hela avec les plasmides porteurs de mutations simple, double ou triple.
    Etude de la localisation membranaire de CFTR par microscopie confocale a été effectuée en visualisant la fluorescence verte due à l’étiquette GFP (Green Fluorescent Protein) de la protéine chimère CFTR-GFP.

    Environnement technique :
    Extraction de l’ADN plasmidique à partir de cellules bactériennes :
    Culture cellulaire eucaryote
    Transfection à la lipofectamine
    Extraction de l’ADN total des cellules transfectées
    PCR
    Séquençage des plasmides Electrophorèse des produits de PCR Microscopie Confocale
    Western blot
  • NOVESCIA Paris Sud - Technicienne de laboratoire

    2014 - 2014 Accueil des patients, prélèvements biologiques, techniques biomédicales
  • SELARL BIO EPINE - Technicienne de laboratoire

    2011 - 2012 Technicienne de laboratoire - SELARL BIO EPINE Paris Accueil des patients, prélèvements biologiques, techniques biomédicales
  • Laboratoire de Chimie et Microbiologie de l'Eau CNRS UMR 6008, Poitiers - Ingénieur de Recherche

    2010 - 2010 Ingénieur de Recherche - Laboratoire de Chimie et Microbiologie de l'Eau CNRS UMR 6008, Poitiers (stage)
    Projet : Etude de la transduction du signal au cours de l'enkystement des amibes
    * Etude et synthèse bibliographiques
    * Mise en place de protocoles ;
    * Etude de la voie des MAPKinases particulièrement aux récepteurs transmembranaires à activité tyrosinekinase ;
    * Culture cellulaire, induction de l'enkystement, marquage des kystes au rouge Congo ;
    * Détermination des pourcentages de kystes par cytométrie en flux ;
    * Etude de l'expression et la localisation cellulaire des protéines kinases impliquées par Immunofluorescence indirecte ;
    * Étude et interprétation des résultats, poser et vérifier des hypothèses
    Environnement technique : Microscopie à fluorescence, Culture cellulaire, Microscopie Confocale, cytométrie en flux, Microscope Optique.
  • Institut de Physiologie et de Biologie Cellulaires - Assistante de recherche

    2009 - 2009 Institut de Physiologie et de Biologie Cellulaires UMR CNRS 6187, Poitiers (stage)
    Projet : Etude de l'impact des associations de protéines CFTR mutées.
    * Utilisation de plasmides mutés, extraction de l'ADN plasmidique et réalisation de PCR ;
    * Transfection des cellules Hela avec les plasmides porteurs de mutations simple, double ou triple ;
    * Etude de la localisation membranaire de CFTR par microscopie confocale ;
    Environnement technique : PCR, Extraction d'ADN, Extraction des protéines, séquençage.
  • Laboratoires privés et hôpitaux - Technicienne de Laboratoire

    2005 - 2006 Technicienne de Laboratoire - Laboratoires privés et hôpitaux -
    Analyses biomédicales, prélèvements sanguins et vaginaux, analyses biochimiques, immunologiques, bactériologiques, hématologiques, parasitologiques


    LANGUE ET INFORMATIQUE

    Anglais : niveau intermédiaire ,
  • Laboratoire d'analyses médicales - Technicien de laboratoire

    2005 - maintenant Analyses biomédicales
    Prélèvements sanguins et vaginaux
    Analyses biochimiques, immunologiques, bactériologiques, hématologiques, parasitologiques

Formations

  • Université Paris

    Paris 2013 - 2014 DIU

    Niveau DIU Vaccinologie et Maladies Infectieuses
  • Université Paris 7 Diderot

    Paris 2012 - 2013 DIU

    Niveau DIU Oncogénétique - Université Paris Diderot
  • Paris Descartes (Paris)

    Paris 2011 - 2012 Diplôme Universitaire Thérapeutiques Immunologiques
  • Univerité Poitiers

    Vienne 2008 - 2010 Masters 1 et 2 Biologie Cellulaire Moléculaire et Génétique avec unité optionnelle Microbiologie - Poitiers
  • Université Besançon Franche Comte

    Besancon 2007 - 2008 Licence 3

    Licence 3 Biochimie Biologie Cellulaire et Physiologie à
  • Ecole Suérieure Polytechnique De Dakar (Dakar)

    Dakar 2003 - 2005 DUT analyses biologiques et biomédicales

Réseau

Annuaire des membres :