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Groupe Hospitalier Pitié-Salpêtrière, UMRS 945 Immunorégulation et Immunothérapies, Paris
- Ingénieur d'études
2012 - maintenant
Extraction d’ARN à partir échantillons sanguins, évaluation des RIN (Rna Integrity Number) par BioAnalyseur Agilent, Gradient de Ficoll, Formation d’accidents d’expostion au sang (AES).
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CNRS / LEBS, UPR 3082, Equipe Dynamique du Cytosquelette
- Ingénieur d'études en techniques biologiques
2010 - 2012
Activité :
Expression et production de protéines régulatrices du contrôle de l'auto-assemblage dissipatif des polymères d'actine. Contrôle de la nucléation et de l'assemblage processif des filaments par les machineries protéiques couplées aux voies de signalisation. CDD Ingénieur d'études en techniques biologiques (LEBS, UPR 3082, Equipe Dynamique du Cytosquelette).
Techniques mises en oeuvre :
Clonage, mutagénèse dirigée, GST pull-down, expression de protéines recombinantes dans des systèmes procaryotes, extraction (sonication), purification par chromatographie d'affinité, d'exclusion, et sur échangeur d'ions (Akta Purifier), culture en erlens, Microscopie TIRF, gestion des stocks.
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Faculté des sciences d'Orsay / IBBMC, UMR 8619 Equipe de Génomique Structurale
- Ingénieur en techniques biologiques
2007 - 2009
Activité :
Ingénieur d'études (CDD) sur la plateforme de Génomique Structural, clonage, production, purification. IBBMC, UMR 8619 Equipe de Génomique Structurale).
Techniques mises en oeuvre :
Clonage, mutagénèse dirigée, expression de protéines recombinantes dans des systèmes procaryotes et eucaryotes, extraction (sonication), purification par chromatographie d'affinité, d'exclusion, et sur échangeur d'ions (Akta Purifier, Prime, et Xpress), Western Blot, culture en erlens, biorecteurs Applikon et DasGip (Pichia Pastoris, E.coli), gestion des stocks, encadrement de stagiaires.
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BioMérieux S.A.
- Stagiaire de Master 2 professionnel
MARCY-L'ETOILE
2006 - 2006
Thème abordé :
Faisabilité d'une NASBA (Nucleic Acid Sequence Based Amplification) multiplex pour la détection et l'identification d'espèces de Candida. (Stage de Master 2 Professionnel dirigé par Dr. Javier Yugueros-Marcos).
Techniques mises en oeuvre :
Conception d'amorces et de sondes moléculaires (Molecular Beacon), lyse des levures par FastPrep, extraction, purification d'acides nucléiques par NucliSens miniMAG, NASBA sur plateforme NucliSens EasyQ, SmartCycler, et GeneXpert, analyse de l'ARN sur bioAnalyseur Agilent, culture de Candida.
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Unité INSERM 627, Toxines bactériennes dans la relation hôte pathogène
- Technicien
2005 - 2006
Thème abordé :
Étude de différents types d'EDINs-A, B, C, sauvages et mutantes, production, purification, test sur cellules. Faisabilité d'un test d'identification des EDINs, de souches hospitalières de Staphylococcus aureus par PCR multiplex. (Equipe du Dr. Emmanuel Lemichez).
Techniques mises en oeuvre :
Clonage, extraction-purification d'ADN plasmidique (miniprep, maxiprep), amplification par PCR, expression de protéines recombinantes dans des systèmes procaryotes, extraction (Presse de French), et purification par chromatographie d'affinité (Nickel, GST), SDS-PAGE, dosage de protéine (Bradford), Western Blot, culture (E.coli, Staphylococcus aureus, cellules HUVEC), notions de microscopie confocal.
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Unité INSERM 627, Toxines bactériennes dans la relation hôte pathogène
- Stagiare
2004 - 2004
Thème abordé :
Étude de l'EDIN-A, Facteur de virulence de Staphylococcus aureus responsable de macrofenestrés sur les parois endothéliales. (Dirigé par Dr. Emmanuel Lemichez).
techniques mises en oeuvre :
Techniques basiques de biologie moléculaire, mutagénèse dirigée par PCR, expression EDIN-A dans un système procaryote, extraction, et purification sur colonne nickel, déplétion d'ARNm par la technique « siRNA ».
