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EPFL
- Collaborateur Scientifique
2011 - maintenant
Conseil pour l'acquisition d'image: Microscopie confocale, multiphoton, 3-5D.
Formation, programmation et personnalisation de programmes pour l'analyse d'images.
Programmes utilisés:
Imaris, ImageJ, Metamorph, Voxx, Suite Adobe;
Matlab, R, Prism;
Suite Microsoft.
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CNRS-UM5089-IPBS
- PhD
2007 - 2011
Caractérisation des mécanismes cellulaires et moléculaires de la migration en trois-dimensions des macrophages humains.
Mots-clés:
macrophages / matrice extra-cellulaire / sphéroïdes tumoraux / podosomes / actine / Hck
Techniques utilisées:
Microscopie confocale , multi-photon pour échantillon fixé et vivant.
Préparation, utilisation, de sphéroïdes tumoraux, de matrice extracellulaire 3D (Collagen, Matrigel),
Culture de cellules tumorales et isolation de monocytes humain primaire.
Transgenèse transitoire ou stable, génération et sélection de clones d'expression stable.
Logiciels:
MS office, Adobe Illustrator/Photoshop, ImageJ, Prism
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Centre d’Ingénierie des Protéines, service Macromolécules Biologiques. Liège, Belgique
- Stagiaire (3ème année Ecole d'Ingénieur)
2006 - maintenant
Obtention, production, purification et caractérisation de protéines recombinantes. Etude des β-lactamases de classe D OXA-10 et OXA-1 de Pseudomonas aeruginosa.
Techniques utilisés:
Mutagenèse dirigée,clonage, production,purification et analyses d'ADN.
Production, purification et analyses de protéines.
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Sanofi-Synthelabo Recherche, département Thrombose & Angiogénèse. Toulouse
- Stagiaire (2ème année Ecole d'Ingénieur)
2005 - maintenant
Mise au point d’un test de screening (mesure du temps de génération de thrombine)
Techniques utilisées:
Culture cellulaire,
Cytométrie de Flux,
Fluorométrie.
