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Magalie COLLET

FARMINGTON

En résumé

Mes compétences :
Cytométrie en flux
Immunofluorescence
Tissue processing
Extraction d'ARN
Isolation d'organes de souris
Isolation d'embryons de souris
Microtome
PCR
Western blot
Culture cellulaire
ATAC sequencing
ChIP sequencing

Entreprises

  • The Jackson Laboratory - Research Assistant II

    2014 - maintenant Project: Identification de nouveaux genes non codant appelés LncRNA impliques dans diverses maladies allergiques telles que l'Asthme. Etude pediatrique en cours.

    Techniques utilisées: culture cellulaire, sort de cellules, differentiation cellulaire, cytometry de flux, extraction d'ARN, qPCR, RT-PCR, ATAC seq, ChIP sequencing.

  • Baylor Institute for Immunology Research - Stagiaire

    2012 - 2013 Project de Master 2: "Caracterisation des Cellules Lymphoides Innees de type 2 dans le sang humain" of type 2 Innate Lymphoid Cells in Human Blood.
    Responsable: Dr. Young Jun Liu.

    Techniques utilisées: isolation des ILC2 dans le sang périphérique de donneurs sains afin de caractériser phenotypiquement les cellules pour des marqueurs spécifiques de surface ainsi que les gens impliques dans leur développement. Recherche de mise en culture et proliferation cellulaire afin de maximiser leur croissance et de connaitre a quelles cytokines ces cellules répondent-elles.

  • Baylor Institute for Immunology Research - Research Assistant

    2012 - 2014 1/ Project: Caracterisation des Cellules Lymphoides Innees de type 2 chez l'humain.
    Isolation des ILC2 dans le sang périphérique/le sang de cordon/la moelle osseuse/amygdales

    Techniques maîtrisées:
    -culture cellulaire (court et long terme)
    -Cytometry de flux 12 couleurs (Canto 2, LSRII, Fortessa)
    -Extraction d'ARN
    -RT PCR, qPCR
    -analyses de micro array

    2/ Etude clinique des ILC chez les patients ayant un cancer du sein
    Techniques: Cytometry de flux utilisées sur sang et tumeurs.


    3/ Collaboration sur une etude de la grippe.
    Techniques: culture cellulaire, cytometry de flux, ELISA.

  • University of Texas Southwestern Medical Center - Stagiaire

    2011 - 2011 Etude des effets de la mutation du gène Tcf 21 codant pour un facteur de transcription sur le développement splénique murin.
    Mutation de Tcf21: souriceaux aspléniques à partir de E12.5.
    Localisation cellulaire et comparaison de son expression entre populations Wild Types et Hétérozygotes à différents stades embryonnaires et post-nataux.
    Utilisation de lignées de souris avec différents reporteurs de gènes sous le système Cre-LoxP: Tomato, Lac Z, GFP.


    Techniques maitrisées : isolation d'organes différents stades embryonaires, congélation et section via microtome, génotypage PCR, marquage anticorps (élaboration gamme étalon, visualisation et acquisition photos sur microscope à fluorescence), extraction d'ARN, Real Time PCR (comparaison d'expression de gènes)...

    Formation de 3 nouveaux stagiaires sur ces techniques de laboratoire.

  • Institut Pasteur - Stagiaire

    Paris 2010 - 2010 Etude de l’implication des récepteurs TLR9 et 7 dans l’activation des cellules dendritiques, macrophages et lymphocytes B par l’ADN parasitaire de Leishmania Major.

    Techniques maitrisées : extraction de ganglions lymphatiques, culture cellulaire niveau 2, marquage anticorps, cytométrie en flux (aquisition, analyse)...

Formations

Réseau

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