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INSERM
- Ingénieur d'études
PARIS 13
2005 - 2008
Mission de 3 ans: Responsable de la plate-forme "Hybridation in situ et immunohistochimie" de l'unité INSERM U833 (ex-U36) "Angiogénèse embryonnaire et pathologique"
Compétences:
Biologie moléculaire :
- synthèse de sondes radioactives 35S et de sondes froides marquées
à la digoxygénine
- digestion enzymatique
- minipréparation et préparation en grande quantité de plasmides
Histologie moléculaire :
- hybridations in situ et in situ in toto en sonde chaude et en
sonde froide (développement de techniques)
- responsable et pratique du robot AutoStainer Plus de l’unité U833
- immunohistochimie (mise au point de nouveaux marquages)
- inclusion en sucrose-gélatine et en paraffine
- pratique du microtome, du cryostat et du vibratome
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INSERM
- Ingénieur d'études
PARIS 13
2004 - 2005
Mission de 6 mois: Caractérisation de souris transgéniques par coloration X-Gal,hybridation in situ et immunohistochimie
Compétences:
Biologie moléculaire :
- PCR, clonage, sous clonage : extraction d’ADN sur gel,
purification puis ligation, digestion enzymatique, minipréparation
et préparation en grande quantité de plasmides
- synthèse de sondes radioactives et de sondes froides
- génotypage de queues de souris
Culture cellulaire:
- repiquage de cellules ES
Histologie moléculaire :
- hybridations in situ et in situ in toto en sonde chaude et en
sonde froide (mise au point)
- immunohistochimie
- inclusion en sucrose-gélatine et en paraffine
- pratique du microtome, du cryostat et du vibratome
- coloration X-Gal sur coupe et sur organe
Expérimentation animale : préhension, dissection et prélèvements, identification, croisement
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SCHERING-PLOUGH
- Stagiaire
Hérouville-Saint-Clair
2003 - 2004
Stage de 8 mois dans le cadre de mon DESS: Etude de la biologie du récepteur TLR9
Compétences:
Biologie moléculaire :
- PCR, clonage, sous clonage : extraction d’ADN sur gel,
purification puis ligation, digestion enzymatique, minipréparation
et préparation en grande quantité de plasmides
- génotypage de queues de souris
Biologie cellulaire :
- marquages intracytoplasmiques direct et indirect, et pratique de
la cytométrie en flux
- transfection (fugene 6) et test d’activité fonctionnelle
(luciférase)
- culture cellulaire (congélation, décongélation, clonage)
- purification protéique sur billes et sur colonne
- western blot et colorations à l’argent et au bleu de Coomassie
Expérimentation animale : préhension, dissection et prélèvements, injection, identification, croisement
