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Julia LEEMPUT

Dijon

En résumé

Les différents stages et mon expérience professionnelle m’ont permis d’acquérir et de développer des connaissances techniques et théoriques en :

biologie moléculaire et cellulaire
histologie
biochimie
expérimentation animale (Niveau I)

Dans le cadre de mon parcours professionnel, j'ai mené aussi bien des études in vitro qu'in vivo.

Entreprises

  • Université De Bourgogne - Ingénieur d'études

    Dijon 2017 - maintenant

  • Université de Bourgogne - Assistante ingénieur

    Dijon 2014 - 2017

  • Institut Curie, UMR CNRS 3244 - Ingénieur

    2012 - 2014 Etude de la fonction et de la régulation du suppresseur de tumeur p53 et de certains de ces régulateurs à l’aide de mutations ciblées chez la souris.

    Compétences :

    ChIP (Chromatine immuno-précipitation)

    Préparation de MEFs (Mouse Embryonic Fibroblasts)

    Etude de l’apoptose ou de l’arrêt du cycle cellulaire par FACS, après irradiation aux rayons gamma de souris ou de MEFs (Mouse Embryonic Fibroblasts)

  • UMR / CNRS 6237 - URCA - Ingénieur

    2009 - 2011 Rôle des peptides d’élastines et contrôle des protéases matricielles dans le vieillissement et la réparation cutanée

    Compétences :

    Biologie moléculaire : Extraction et amplification d'ARN, Extraction d’ADN, RT-PCR, PCR, q-PCR

    Biochimie des protéines : Extraction des protéines, Western Blot, Zymographie en gel de gélatine et zymographie inverse, test ELISA

    Biologie cellulaire : Cultures cellulaires de kératinocytes (Hacat),culture primaire de kératinocyte humain (NHEK) et de fibroblastes (NHDF), Etude de la prolifération (WST-1), Etude de la migration (vidéo-microscopie, transwell)

    Gestion : Gestion d’un budget de 15 Keuros / an

  • Centre de recherche thérapeutique en ophtalmologie - Doctorante

    2004 - 2008 ATM (ataxia telangiectasia mutated) et OGG1 (8-oxoguanine ADN glycosylase) : Etude de deux enzymes majeurs impliquées dans la reconnaissance des lésions de l’ADN dans l’œil de souris

    Compétences :

    Biologie moléculaire : Extraction et amplification d'ARN, Extraction d’ADN génomique, RT-PCR, PCR,Clonage bactérien

    Histologie : Inclusion et coupe de tissus au microtome et au cryostat, Hybridation in situ froide et radioactive, Immunohistochimie, immunohistofluorescence

    Biologie cellulaire : Cultures cellulaires de lignées de neuroblastomes murin (Neuro2A), de rétinoblastome humain (Y79)
    Microscopie optique et microscopie à fluorescence

    Biochimie des protéines : Extraction de protéines, Western Blot, Immunoprécipitation

    Expérimentation animale – Niveau I : Maintien de colonies, reproduction
    Prélèvement d'organes et dissection, Injection (intra-péritonéale, intra-musculaire), Microdissection de la rétine, Electrorétinographie

    Gestion : Gestion des consommables et des commandes

    Informatique : Maîtrise des logiciels Word, Excel, PowerPoint, Endnote
    Logiciel de traitement d’image ImageJ et Photoshop

  • Centre de recherche thérapeutique en ophtalmologie - Stagiaire DU Recherche et Developpement en Biotechnologies

    2004 - 2004

  • CEA Génopole d'Evry - Stagiaire du DEA de Génétique humaine

    2002 - 2003 Caractérisation du transcriptome des cellules souches musculaires et hématopoïétiques chez la souris par hybridation sur les puces à ADN

    Compétences :

    Biologie moléculaire : Hybridation sur puce à ADN, Extraction et amplification d'ARN

    Informatique : Logiciels Genepix, Genespring (analyse de puce à ADN)

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