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Stéphanie QUARRÉ

Lille

En résumé

Mes compétences :
Chromatographie liquide
BPL
ICP
Spectrométrie de masse
MLA TK
Test des comètes et test des micronoyaux
Extraction des éléments traces métalliques
Culture cellulaire
Utilisation d'outils informatiques
Utilisation de logiciels spécifiques
Tests de génotoxicité: : test des comètes, microno
Techniques de biochimie et biologie moléculaire :
Hybridation in situ, immunohistochimie
Extraction d'échantillon sur phase solide et liqui
Analytiques: ICP-MS, ICP-AES, HPLC, UPLC
Informatiques: Microsoft Excel, Word, Powerpoint
PCR
Western Blotting
UPLC
Microsoft Word , Excel , Powerpoint
ICP-MS
western blot
ELISA

Entreprises

  • CHRU Lille - Technicienne

    Lille 2014 - 2015 - Techniques de biologie moléculaire : PCR, Séquençage par la méthode Sanger, NGS (Illumina, PGM), Taqman (discrimination allélique)
    - Développement : élaboration de primers et des conditions d’amplification.
  • chru lille - Technicienne

    2014 - maintenant : Technicienne - Laboratoire Génopathies et Pharmaco/Toxicogénétique-Centre
    Biologie Pathologie -
    Compétences acquises :
    - Techniques de biologie moléculaire : PCR, Séquençage par la méthode Sanger, NGS (Illumina, PGM), Taqman (discrimination
    allélique)
    - Développement : élaboration de primers et des conditions d'amplification.
  • Faculté de Médecine Pôle Recherche - Assistante Ingénieur

    2013 - maintenant Projet « Stratégie d'identification de nouveaux mécanismes moléculaires impliqués dans le processus de fibrose pulmonaire»

    Compétences acquises :
    - Culture cellulaire de lignées pulmonaires (MRC5, A549), transfection de micro-ARN, stimulation avec des substances ;
    - Techniques de biochimie et biologie moléculaire : ELISA ; Western Blot ; Extraction et dosage de protéines et ARN avec kit protein Biology de Thermo et Trizol reagent extraction ; RT et Q PCR avec kits Taqman ;
    - Mise au point et développement des techniques d'Hybridation In Situ et immunohistochimie sur coupes d'organes inclus en paraffine (foie, rein, poumon) ;
    - Manipulation in vivo : administration IP sur souris, dissection pour récupération d'organes.
  • EFS - Technicienne

    2013 - 2013 Laboratoire d'immuno-hématologie- Ets Français du Sang Valenciennes
    En charge de la réalisation des groupes et phénotypes sanguins sur différents automates d'Immuno-Hemato : Qwalys® 3(Diagast), Wadiana® 8XT (Grifols) et vérification par méthode manuelle.
  • EA 4483 - Faculté de médecine pôle recherche - Lille - Assistante Ingénieur

    2013 - 2014 Projet : «Etude des mécanismes cellulaires et moléculaires impliqués dans la pathogenèse de la fibrose pulmonaire idiopathique »
    Compétences acquises :
    - Culture de lignées de cellules pulmonaires (A549, MRC5), transfection de micro-ARN, stimulation avec des substances ;
    - Techniques d'immuno-histochimie et d'hybridation in situ sur coupes d'organes inclus en paraffine ;
    - Techniques de biochimie : Western Blot, test ELISA, extraction et dosage de protéines et d'ARN ;
    - Techniques de biologie moléculaire : PCR en temps réel, génotypage sur queue de souris ;
    - Expérimentation Animale Niveau II
  • Institut Pasteur Lille - Laboratoire de toxicologie génétique - Chargée d'étude

    2011 - 2013 Projet NanoGenoTox « Évaluation de la sécurité des nanomatériaux manufacturés par la caractérisation de leur danger potentiel génotoxique ». Certaines techniques mises en place seront adoptées pour l'offre de services du laboratoire.

    Compétences acquises :
    - Culture de différents types cellulaires (Caco2, 16HBE, L5178Y, lymphocytes humains) ;
    - Tests de génotoxicité: test des comètes, micronoyau (moelle osseuse, colon), MLA TK, tests in vivo sur différents organes de rats ;
    - Manipulation sous BPL, travail sous hotte, protection individuelle ;
    - Constitution d'équipes (5 personnes) ;
    - Analyse statistique et critique des résultats, création de modèles de rapports Excel et détermination de mises au point
  • INSTITUT PASTEUR LILLE - Chargée d'étude

    2011 - 2013 Projet NanoGenoTox « Évaluation de la sécurité des nanomatériaux manufacturés par la caractérisation de leur danger potentiel génotoxique ». Certaines techniques mises en place seront adoptées pour l'offre de services du laboratoire de toxicologie génétique. Compétences acquises :
    - Culture de différents types cellulaires (Caco2, 16HBE, L5178Y, lymphocytes humains) ;
    - Tests de génotoxicité: test des comètes, micronoyau (moelle osseuse, colon), MLA TK, tests in vivo sur différents organes de rats ;
    - Manipulation sous BPL, travail sous hotte, protection individuelle ;
    - Constitution d'équipes (5 personnes) ;
    - Analyse statistique et critique des résultats, création de modèles de rapports Excel et détermination de mises au point
  • Faculté de pharmacie Lille - laboratoire de botanique - Technicienne de laboratoire

    2009 - 2011 En charge des dosages du Projet IRENI « Suivi des éléments traces métalliques dans des populations adultes et nouveaux nés et leur environnement dans la région Nord-Pas de Calais »

    Techniques maîtrisées : Traitement et minéralisation des échantillons biologiques (lichens), dosage des éléments traces métalliques par ICP-OES et ICP-MS, utilisation du logiciel ICPExpert (Varian)
  • Faculté de Pharmacie - Technicienne

    2009 - 2011 En charge des dosages du Projet IRENI « Suivi des éléments traces métalliques dans des populations adultes et nouveaux nés et leur environnement dans la région Nord-Pas de Calais ».
    Compétences acquises :
    - Traitement et minéralisation des échantillons biologiques (lichens)
    - Dosage des éléments traces métalliques par ICP-OES et ICP-MS
  • CHRU Lille - laboratoire toxicologie et génopathies - Technicienne de laboratoire

    2008 - 2009 Projet de développement en partenariat avec Waters « Evaluation de protocoles d’extraction pour la recherche large de xénobiotiques dans des matrices biologiques». Stage reconduit en CDD.

    Techniques maîtrisées : Extraction sur phase solide et liquide/liquide, création de pools de molécules dans du sérum et de l’urine, analyse sur UPLC-MS-MS, apprentissage sur logiciel Masslynx et Chromalynx (Waters)
  • CHRU LILLE - Technicienne

    2008 - 2009 Projet de développement en partenariat avec Waters « Evaluation de protocoles d'extraction pour la recherche large de xénobiotiques dans des matrices biologiques».
    Compétences acquises :
    - Extraction sur phase solide et liquide/liquide
    - Analyse sur UPLC-MS-MS de pools de molécules dans du sérum et de l'urine
  • Faculté de pharmacie Lille - laboratoire de pharmacognosie - Stagiaire

    2007 - 2008 Stage : « Isolement, purification et détermination structurale de molécules à potentiel aphrodisiaque issues de racines de 2 plantes d’Afrique Occidentale »

    Techniques maîtrisées : Extraction sur colonne de silice, CCM, analyse par HPLC
  • Faculté de Pharmacie de Lille 2 - Laboratoire de Pharmacognosie - Technicienne

    2007 - 2008 Stage : « Isolement, purification et détermination structurale de molécules à potentiel aphrodisiaque issues de racines de 2 plantes d'Afrique Occidentale »
    Compétences acquises : - Extraction sur colonne de silice, CCM
    - Analyse par HPLC
  • Faculté de médecine Lille - laboratoire de pharmacologie - Stagiaire

    2006 - 2007 Stage : «Etude de l’action de la mémantine lors d’une ischémie-reperfusion chez le rat.»

    Techniques maîtrisées : Anesthésie et ischémie-reperfusion de l’artère cérébrale moyenne chez le rat, sacrifice et coupe du cerveau au cryostat, tests comportementaux, injection intra-péritonéale

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