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Thibaut LEGER

Rennes cedex

En résumé

Mon domaine de prédilection est la protéomique et la métabolomique et plus particulièrement les techniques biochimiques de séparation et de purification des petites molécules, peptides et protéines ainsi que la spectrométrie de masse.

Mes compétences :
Spectrométrie de masse
HPLC
Biochimie
Protéomique
Métabolomique

Entreprises

  • Ehesp - Ecole Des Hautes Études En Santé Publique - Ingénieur de Recherche en métabolomique

    Rennes cedex 2019 - maintenant Métabolomique et protéomique

  • Institut Jacques Monod - Université Paris 7 - Responsable technique plate-forme, PhD

    2010 - 2019 - Gestion plate-forme de protéomique (prestations, collaborations)
    - appareillage:
    * Spectromètre de masse Orbitrap Fusion (Thermo scientific),
    * Spectromètre de masse de type ESI LTQ Orbitrap Velos (Thermo scientific),
    * Spectromètre de masse Q-exactive plus (Thermo scientific),
    * Spectromètre de masse de type MALDI TOF/TOF ABI 4800 (Applied Biosystems),
    * Système de chromatographie nanoLC Proxeon 1000 (Thermo Scientific),
    * Système de chromatographie nanoLC Ultimate 3000 (Dionex),
    * Collecteur de microfractions Probot (Dionex),
    * Automate « digesteur » Microlab Starlet (Hamilton),
    * Automate EXQuest pour « Spot picking » (Biorad) piloté par le logiciel PD Quest.

  • U698 Inserm - Ingénieur d'étude

    2008 - 2010 Recherche de biomarqueurs plasmatiques de l'athérosclérose par approche protéomique SELDI-TOF et 2D comparative.

  • U699 inserm - Ingénieur d'étude

    2006 - 2008 Laboratoire d'immunologie.
    gestion d'un projet concernant l'hypersensibilité de type1.
    En particulier la voie d'activation des mastocytes via le récepteur FCepsilonR1.
    Techniques utilisées: culture cellulaire (lignées, hybridomes),
    biochimiques (Immunoprécipitations, western-blot...),cytométrie de flux, biologie moléculaire.

  • LR2B de Boulogne sur mer - Technicien de laboratoire

    2006 - 2006 Etude de la différenciation ostéoblastique.
    Techniques abordées: culture cellulaire (lignées, culture primaire), biologie moléculaire: RT-PCR, qPCR (Roche)

  • CEA Marcoule (30) - Ingénieur stagiaire

    2005 - 2005 Recherches pendant 6 mois au sein du Service de biochimie post- génomique et toxicologie nucléaire de la Direction des Sciences du Vivant.
    Mes travaux ont porté sur la recherche de partenaires et substrats d'une protéine du cycle cellulaire: Chk2 à partir d'extraits cellulaires. Les finalités de cette étude visaient à mieux comprendre la fonction de cette Sérine /thréonine kinase et son rôle majeur dans le cycle cellulaire, par le biais des mécanismes moléculaires mis en jeu aprés des dommages de l'ADN.
    Cette étude repose en partie sur la mise au point de tests de phosphorylation in vitro et sur la technique du GST-Pull Down.
    Techniques utilisées : 2D comparative, MALDI-TOF, Pull-Down, Western-Blot.

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

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