Angelina BERTRAND

En résumé

Entreprises

• Valneva (ex-Vivalis) - Technicienne R&D biologie moléculaire

  2012 - maintenant - Technicienne sur la plateforme ViVaScreen
  - Champ d'action : de la cellule unique à l'anticorps fonctionnel
  - RT-PCR sur cellules uniques
  - Technique de recombinaison homologue IN-FUSION
  - Biologie moléculaire : linéarisation, construction, PCR
  - Production d'anticorps en système CHO (du screening des surnageants à la production moyenne échelle)
  - Purification des anticorps par le système AKTA
  - ELISA : quantification d'Ig
  - Analyse et traitements de séquences
  - Participation à la réflexion et la mise au point de techniques pour améliorer la technologie (efficacité, rendement...)
  - Mise en forme et traitement des résultats
  - Automate : NX Biomek BECKMAN

• Valneva (Ex-Vivalis) - Technicienne R&D culture cellulaire et biochimie

  2011 - 2012
  - En charge de l'étude du mécanisme d'action de petites molécules avec recherche et mise en place autonome de différentes expérimentations pour ces caractérisations.
  - Techniques d’EC50 de molécules pharmacologiques sur replicon HCV subgenomique non infectieux, sur Huh LucNeoET, Huh 9.13
  - Biologie moléculaire : linéarisation, construction, PCR
  - Technique de transcription in vitro d’ARN et transfection transitoire ou stable de l'ARN
  - Western Blot : mise au point et réalisation
  - Mise en forme et traitement des résultats
  - Utilisation de luminomètres(relatifs aux EC50) : Berthold, Pherastar
  - Automate : FX Biomek BECKMAN
  - Logiciel : GraphPadPrism

• Valneva (ex-Vivalis) - Technicienne culture cellulaire en zone blanche

  2010 - 2011 • établissement d'une lignée de feeder STO mycoplasma-free par AMAXA
  • sélection et caractérisation de clones cellulaires: FACS, immortalisation par irradiation, GIEMSA, établissement de banques cellulaires
  • travail sur cellules souches propriétaires (en condition GMP et respect des BPL)
  • Mise en forme et traitement des résultats
  

• INSERM U935 - Technicienne de recherche

  2006 - 2010 • Tests de détection et de quantification des cellules souches hématopoïétiques : Culture de cellules primaires à court (test clonogénique en methylcellulose) et long terme (LT-CIC)
  • Techniques de culture dans les conditions d’autorenouvellement et de différenciation hématopoïétique des cellules souches embryonnaires murines
  • Techniques de transfert de gènes, dans les cellules souches hématopoïétiques murines
  • Techniques de programmation cellulaire pour génération d’IPSC (induced pluripotent stem cells)
  • Etablissement de lignées à partir de tissus porcins : fœtus (PEF), embryon (ICM)
  • Lipofection, Amaxa
  • Tri de cellules par système de billes magnétiques couplées à un anticorps
  • Cytométrie de flux : FACS Calibur, FACS Canto : entretien, réglages, marquage, analyse (CellQuestPro, FACS Diva)
  • Western Blot, extraction protéique
  • Biologie Moléculaire : clonage, construction et préparation de plasmides, RT-PCR quantitative, PCR, Low Density Array
  • Mise en forme et traitement des résultats
  • Gestion du laboratoire : commandes, stock, planning des expériences
  • Encadrement d’étudiants L3, M1 et M2

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

• Amaury LE BODO

• Arnaud LEON

• Brice MADELINE

• Camille RIVIERE

• Carla PAQUET

• Fanny BERTRAND

• Guillaume RABILLER

• Simon CHEPEAU

• Veronique PENTECÔTE

• Virginie BELIN