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Blanco AMANDINE

LYON

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Titulaire d’un Master professionnel de Génétique et Biologie de la Cellule option INFECTIOLOGIE de Lyon I, j'ai auparavant été diplômée d'une Licence (L3) de « Biologie Générale » à l’UJF (Grenoble) et d'un BTS de "Biotechnologie" au Lycée la Martinière Duchère (Lyon): ce parcours m'a permis d'aquérir une approche terrain en plus d’une formation transversale.
Je dispose de différentes expériences professionnelles à la fois en recherche fondamentale et appliquée, en laboratoire public et privé, ainsi que dans les domaines de la virologie, vaccinologie et bactériologie.
A travers ces approches professionnelles j’ai pu montrer mon sens des responsabilités, de l’organisation, de la communication et également celui de la rigueur et de la ténacité.

Compétences informatiques
Vector NTI, NCBI, ExPASy, Swiss-Prot, PROSITE, ClustalW, MaGe.
Autres activités : BAFA - AFPS - Permis B

AUTRES EXPERIENCES PROFESSIONNELLES
Association des Activités de Haute Combe de Savoie
- 2006 : Responsable du Centre de loisirs de Grésy sur Isère (2 mois)
- 2005 : Animatrice du Centre de loisirs de Frontenex (2 mois)
Cours du soir pour des élèves issus de 3ème
- 2004-2006 : Matières enseignées : mathématiques et physiques

Mes compétences :
Biologie moléculaire
Microbiologie
Recherche et développement
Virologie
Bactériologie
Microscopie confocale

Entreprises

  • IBCP / BMSSI - Ingénieure CNRS

    2012 - maintenant Unité : Cell biology of bacterial pathogenicity

    Mission 1 : Responsable laboratoire NSB2 - Déléguée laboratoire NSB3 - MOT

    Mission 2 : Brucella abortus - Etude de l'interaction bactérie pathogène/cellule hôte. Détermination et étude du rôle de nouveaux effecteurs de virulence.
    Participation au consortium CELLPATH (Portugal)


    Domaines d'activités : biologie moléculaire, biologie cellulaire, microbiologie, biochimie, microscopie.

    Formations CNRS: microscopie confocale, cristallogénèse, autoclave.

    Formation Institut Pasteur de Lille : Les laboratoires de sécurité biologique NSB3, NSB4 (3 jours de théorie + 1 jour de pratique)

    Université de Namur (Belgique) : travail en laboratoire NSB3 & Brucella


    http://perso.ibcp.fr/suzana.salcedo/Salcedo_Lab/Home.html
    http://www.ibcp.fr/bmssi

  • MERIAL (division santé animale SANOFI-AVENTIS) - Ingénieure R&D

    2010 - 2012 Durée : 1 an et demi
    Unité : Nouveaux vecteurs viraux

    Mission 1: Exploitation d’un système de vecteur viral pour l’obtention de différentes constructions chimériques, relatives à trois virus X recombinants, destinées à la vaccination d’animaux. Caractérisation et envoi des candidats vaccins en essai clinique.

    Mission 2 : Reconstitution du génome d'un virus X au sein d’un système procaryote via l’utilisation de bacmides pour générer un nouveau système de vecteur viral.

    - Expériences en bactériologie, virologie, biologie moléculaire, manipulation de bacmides, transfection, culture cellulaire, culture de virus sur œufs, titrage, IFI.
    - Rédaction des stratégies expérimentales.
    - Rédaction des rapports associés aux candidats générés dans le cadre d'essais cliniques.
    - Présentation des résultats en français et en anglais.

  • MERIAL (division santé animale SANOFI-AVENTIS) - Stagiaire Master 2 professionnel INFECTIOLOGIE

    2009 - 2010 Durée : 6 mois
    Unité : Nouveaux vecteurs viraux

    Mission : Exploitation d’un système de vecteur viral pour l’obtention de différentes constructions chimériques, relatives à trois virus X recombinants, destinées à la vaccination d’animaux. Caractérisation et envoi des candidats vaccins en essai clinique.
    - Expériences en biologie moléculaire, transfection, culture cellulaire, culture de virus sur œufs, titrage, IFI

  • University of Bristol (UK) - Department of Cellular and Molecular Medicine - Stagiaire Master 1ère année GENETIQUE ET BIOLOGIE DE LA CELLULE (stage non obligatoire)

    2008 - 2009 Durée : 2 mois
    Unité : Cellular and Molecular Medicine

    Mission : Etude du système de sécrétion de type III (SST3) de Shigella flexneri.
    Création de 8 mutants au sein de la protéine MxiH, unité monomèrique de l'aiguille du système de sécrétion de type III (SST3), et étude de l'impact de ces mutations sur la pathogénicité de Shigella flexneri.
    - Expériences en bactériologie, biologie moléculaire, biochimie, biologie structurale.

    - Publication : Fujii, T.1, M.Cheung2, A. Blanco2, T. Kato1, A.J. Blocker2 and K. Namba1. The structure of a type III secretion needle at 7Å resolution provides insights into its assembly and signaling mechanisms (2012) Proc. Natl. Acad. Sci. USA.,109:4461-4466.


    1- Graduate School of Frontier Biosciences, Dynamic NanoMachine Project, ICORP, JST, Osaka University, 1-3 Yamadoaka, Suita, Osaka 565-0871, Japan

    2- Schools of Cellular and Molecular Medicine and Biochemistry, Medical Sciences Building, University of Bristol, University Walk, BS8 1TD, United Kingdom

  • MERIAL (division santé animale SANOFI-AVENTIS) - Stagiaire Master 1ère année GENETIQUE ET BIOLOGIE DE LA CELLULE

    2008 - 2009 Durée : 2 mois
    Unité : Antigènes bactériens

    Mission : Caractérisation de la variabilité génétique de deux gènes codant des protéines d’intérêt vaccinal au sein de 3 sérovars de X.x.
    - Expériences en biologie moléculaire et bioinformatique

  • CEA/CNRS/IRTSV/LBBSI - Stagiaire 3ème année de licence BIOLOGIE GENERALE (stage non obligatoire)

    2007 - 2008 Durée : 2 mois
    Unité : Interaction bactéries pathogènes – hôtes - Grenoble

    Mission : Exploration d’un nouveau système de sécrétion chez Pseudomonas aeruginosa : mise en évidence d’un nouveau transporteur ABC (système de sécrétion de type VI).
    . PA0072-PA0073 : un nouveau transporteur ABC de P.aeruginosa ? Production protéique dans un système hétérologue : Escherichia coli. Clonage individuel ou en tandem de ces deux gènes dans les vecteurs d’expression. Purification / Dosage protéique / Mesure d’activité ATPase.
    . PA0071 : le substrat du transporteur ABC ? Etude de la localisation et du rôle joué par cette protéine.
    - Expériences en bactériologie, bioinformatique, techniques de purification protéique, d’immunodétection par WesternBlot, de tests d’expression et de localisation protéique, détermination d’activité ATPase.

  • AAHCS (Association des Activités de Haute Combe de Savoie - Employée

    2005 - 2006 Mission 2005 (début juillet-fin août)
    - Animatrice dans un centre aéré

    Mission 2006 (début juillet-fin août
    - Responsable d'un centre aéré

  • CRSSA (Centre de Recherche des Services de Santé de l'Armée) - Stagiaire BTS BIOTECHNOLOGIE

    2005 - 2007 Durée : 2 mois
    Unité : Virologie

    Mission 2005-2006 : différencier le virus Monkeypox des autres Orthopoxvirus :
    étude- développement- réalisation d'un kit de diagnostic basé sur une technique de PCR quantitative en temps réel avec sonde TAqMan MGB- écriture de la procédure à breveter.
    - Expériences en PCR/ PCR quantitative en temps réel, extraction et purification d’ADNg ou plasmidique.
    - Kit breveté en fin du stage


    Durée : 2 mois
    Unité : Virologie

    Mission 2006- 2007 : Caractérisation de l'ADN polymérase E9L du virus de la vaccine
    étude de l'activité ADN polymérase de E9L- développement d'un test enzymatique dans le but de sélectionner de nouveaux anti viraux- collaboration avec le CEA (Commissariat à l'Energie Atomique) afin d'automatiser le prototype- mise en évidence d'une activité de recombinaison de E9L.
    - Expériences en ELISA, test de recombinaison.

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

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