Menu

Cécile PRUNIER

SAINT-ETIENNE

Electionseuropéennes 2024

RETROUVEZ GRATUITEMENTLe résultat des européennes à Saint-Étienne ainsi que le résultat des européennes dans la Loire.

En résumé

Bonjour,
Je m'appelle Cécile Prunier, je suis ingénieure en biotechnologies avec la capacité de travailler aussi bien au niveau des gènes que des protéines.
Je suis à l'écoute d'opportunités professionnelles de préférence en région Rhône-Alpes, Bretagne, Pays de la Loire ou Aquitaine. Je souhaite me tourner vers la R&D car j'aime me confronter aux nouvelles problématiques, développer des procédés et les améliorer, en cohérence avec mes missions précédentes. Je reste cependant ouverte à toutes les opportunités.
Avec mes 6 années d'expériences, je possède une solide expertise en expressions et en purifications de protéines mais aussi en biologie moléculaire. J'ai eu à produire de nombreuses protéines telles que des protéines membranaires ou des enzymes impliquées dans la production de molécules odorantes. Lors de ma dernière mission, j'ai complété mes connaissances en biologie moléculaire avec des techniques telles que la marche génomique ou la RACE. Je suis en outre capable de gérer des projets: de la recherche bibliographique à la réalisation finale comme je l'ai fait, par exemple, durant ma mission dans la société Synthelis.
Je suis titulaire d'un master en ingénierie biochimique et biotechnologies mais aussi d'un BTS ANABIOTEC. Ces 2 types de formations m'apportent un double point de vue sur mon métier: à la fois très technique mais aussi plus académique. Ceci me permet de mieux appréhender les futures utilisations, par les clients/équipes techniques, des protocoles développés.
Curieuse de nature, j'aime comprendre et apprendre ce qui m'aide à résoudre les problèmes que je peux rencontrer dans mon travail comme dans la vie de tous les jours.
Capable de travailler en équipe, je suis également rigoureuse et persévérante. Ces qualités m'ont été nécessaires pour mener à bien plusieurs projets en parallèle et permettre le bon fonctionnement des équipes de recherche.
Je suis à votre disposition pour toutes questions ou demandes de renseignements complémentaires.

Mes compétences :
Recherche
Biologie moléculaire
Développement
Chromatographie
Biochimie
PCR et RT-PCR
Purification de protéines
Expression de protéines en système bactérien
Cell-free
Electrophorèse SDS-PAGE et PAGE
Purification d'ADN
Culture un vitro (plantes)
Extraction et purification d'ARN
Clonage

Entreprises

  • Laboratoire de biotechnologies végétales appliquées aux plantes aromatiques et médicinales - Assistante ingénieur

    2013 - 2015 Sujet: étude de la biosynthèse des composés parfumés du Pelargonium odorant.

    Mission: dans le cadre d'une thèse en partenariat avec une société privée, j'avais pour mission d'extraire l'ARN du Pelargonium odorant pour constituer une banque EST afin d'identifier et cloner les enzymes impliqués dans la biosynthèse des composés parfumés. Dès qu'elles ont été clonées, j'ai exprimé, purifié et testé ces enzymes in vitro (activité enzymatique puis détection en GC-MS). Une fois l'activité de ces enzymes identifiées, ces gènes ont été introduits dans des plantes puis leur activité a été vérifiée par GC-MS.

    Techniques utilisées: extraction et purification d'ARN et ADNg à partir de tissus végétaux, RT-PCR, PCR et iPCR, banque de RACE, clonage (classique et système Gateway), marche génomique, GC-MS, culture in vitro et transformations (stables et transitoires) de plantes.

  • Synthélis - Ingénieur R&D stagiaire

    La Tronche 2012 - 2012 Sujet: production et purification d’une enzyme en système bactérien afin d'améliorer le rendement d'un système de production acellulaire de protéines membranaires.

    Mission: j'avais en charge la mise en place de protocoles (à petite échelle) d'expression et de purification d'une enzyme afin d'améliorer le rendement d'un système acellulaire de production de protéines membranaires. J'ai mis en place un test rapide afin d'évaluer l'impact de l'ajout de cette enzyme dans le système acellulaire. Une fois le bénéfice de l'ajout de l'enzyme validé, j'ai transféré à grande échelle les protocoles d'expression et de purification de l'enzyme.

    Techniques utilisées: transcription in vitro, production de protéines en système acellulaire, PCR, expression en système bactérien, purification par chromatographie échangeuse d'ions et chromatographie d'affinité, électrophorèse PAGE et SDS-PAGE, western-blot.

  • CEA Grenoble - Laboratoire de Physiologie Végétale - Ingénieur d'étude

    2011 - 2009 J'avais en charge le clonage, l’expression, la purification et le contrôle qualité de l’ensemble des protéines utilisées par l’équipe. J'étais également chargée d'évaluer la fonctionnalité des nouvelles constructions produites.

    - Clonage en système bactérien (design d'amorces, PCR, digestions enzymatiques, recombinaison, extraction et purification d'ADN, logiciel Gene Constructor Kit)
    - Expression de protéines recombinantes chez E. coli
    - Purification de protéines recombinantes (chromatographie d'affinité et d'exclusion, HPLC)
    - Marquage de protéines (maléimide, NHS, SNAP tag) avec sondes fluorescentes (Alexa, ATTO, Cy)
    - Validation des différentes étapes et tests fonctionnels (électrophorèse SDS-PAGE, spectrofluorimétrie, spectrophotométrique, dosages protéiques, cosédimentation)

  • CEA Grenoble - Laboratoire de Physiologie Végétale - Stagiaire

    2008 - 2009 Sujet: Essais de cristallisation de protéines associées aux microtubules de plantes.

    Mission: amélioration des protocoles d'expressions et de purifications de des différentes protéines étudiées puis lancer des essais de cristallisation de ces protéines.

    Techniques utilisées: expression en système bactérien (E. coli), purification d'affinité et gel filtration, électrophorèse SDS-PAGE, dosages protéiques, cosédimentation, microscopie à épifluorescence, cristallogenèse

Formations

Réseau

Annuaire des membres :