Céline MANDON

En résumé

Entreprises

• CNRS- Université Lyon 1

  maintenant

• 3B's Research Group, University of Minho, Braga/Guimarães, Portugal - Research Associate

  2018 - maintenant

• 3d.FAB - GEMBAS laboratory - Biochips team - ICBMS - UMR 5246 CNRS-UCBL - Research Associate in biotechnology

  2015 - 2018 Chercheur contractuel pour le développement de systèmes bio-analytiques par impression 3D

• AXO Science - R&D engineer - Regulatory affairs & Quality manager

  2012 - 2014

• AxoScience - Consultant R&D - Responsable qualité et Certification CE IVD

  2011 - 2012

• Axoscience / GEMBAS - ICBMS - Université Lyon1 - Chercheur - Ingénierie Médicale et Biologique

  2009 - 2012

• Laboratoire de Génie Enzymatique et Biomoléculaire - ICBMS - UCBL - Chercheur contractuel

  2009 - 2012 Chercheur contractuel sur un projet financé par l'ANR, je suis en charge des études in vitro d’interactions de complexes aptamères-nanoparticules avec leur cible spécifique.
  Parallèlement, je travaille sur la mise au point de cultures cellulaires sur biopuces afin d'affiner les études d’interactions entre nanoparticules et cellules.

• Animage-Créatis-LRMN - Chercheur contractuel

  2007 - 2008 ANIMAGE est une plateforme d’imagerie in vivo du petit animal de laboratoire. Sa vocation est de développer, valider et mettre à disposition de la communauté des biologistes des méthodes d’imagerie dédiée à l’évaluation pré-clinique.
  
  Au sein de l’équipe « marquage et imagerie cellulaire in vivo » mon projet concernait la mise en place, la validation et la réalisation des protocoles expérimentaux de marquage cellulaire (direct et indirect) réalisées chez le petit animal (rats, souris), par de nouveaux agents de contrastes en imagerie IRM, représentés par des nanoparticules de terres-rares, en m’appuyant sur des méthodes d’imagerie microscopique par fluorescence, de quantification et de tests fonctionnels cellulaires.
  l’objectif de ce travail est l’obtention de « kits », permettant le marquage de divers types cellulaires en vue de leur suivi in vivo par imagerie (optique, IRM ou scintigraphie).
  
  Mon travail a concerné en priorité le projet ANR « pnano », intitulé Nano-Gado, pour lequel j'assurait également la coordination entre les différentes équipes partenaires participant au projet.

• Laboratoire du Stress Oxydant, Chaperons et Apoptose - CGMC - UMR 5534 CNRS - UCBL - Post-Doctorat

  2005 - 2006 Développement de puces à cellules pour le criblage de polluants dans le cadre du projet européen STREP ToxDrop (Highly parallel cell culture in nanodrops, a new format for high content cell based toxicity screening on Cell on Chips).
  Elaboration et utilisation de cellules génétiquement modifiées, permettant l'expression d'un gène rapporteur fluorescent sous le contrôle d'une séquence promotrice inductible par le stress.

• Laboratoire de Génie Enzymatique et Biomoléculaire - EMB2 - UMR 5013 CNRS - UCBL - Thèse d'Ingénierie Médicale et Biologique

  2001 - 2005 Mise au point d'un bioessai luminescent à cellules entières, pour la détection de pollutions, basé sur la technologie du promoteur de stress.
  Sujet de recherche développé dans le cadre du projet Européen Mendos (BioMimetic Optical Sensors for Environmental Endocrine Disruptor Screening).

Formations

• Université Lyon 1 Claude Bernard

  Villeurbanne 1995 - 2005 Biochimie - Ingénierie Médicale et Biologique

Réseau

• Cécile DUCASSE

• Corinne BRESSON

• Emilie GILLET

• Guillaume MARTIN

• Karine VILLAUME

• Michel PICARD

• Nicolas REYMOND

• Olivier LUISETTI

• Pascale HAZOT

• Sophie ARMAND