Fanny DE LUCA

En résumé

Entreprises

• bio elpida - Responsable projet développement/fabrication pharmaceutique

  2017 - maintenant

• Bio Elpida - Chargée de recherche

  2013 - 2016

• Bio Elpida - Assistante de Recherche et Développement Industriel

  2013 - 2013

• Bio Elpida - Technicienne R&D industriel

  2012 - 2013

• BioMérieux, Département RetD Biomarqueurs - Ingénieur/Chargée de projet R&D stagiaire (IPROB ESSEP 5) (1an)

  2011 - 2011 Projet : Validation d'une méthode analytique (immunoessai sur système VIDAS) pour discriminer le cancer de la prostate de l’Hyperplasie bénigne de la prostate et
  détermination des performances cliniques de ce test VIDAS sur une cohorte multi-centrique de patients (échantillons biologiques: urine, sérum).
  
  Compétences Techniques acquises:
  Immunologie: Immunoessais sur sytème VIDAS et en microplaque
  Biochimie: Western-Blot, SDS-PAGE et coloration au bleu de comassie, expression, purification et dosage (BCA, Nanodrop) de protéines recombinantes.
  
  
  

• CGMC, Laboratoire 'Signalisation et Renouvellement Cellulaire', Lyon - Ingénieur d'étude stagiaire (M2R Génétique Fonctionnelle et Pathologie Cellulaire) (9mois)

  2009 - 2010 Projet : Étude du rôle de trois protéines du cytosquelette dans la différenciation des cellules FD-Fms en réponse au M-CSF
  
  Compétences techniques acquises:
  Culture cellulaire: entretien de lignées et établissement de lignées stables par infection rétrovirale, nucléoporation de siRNA (amaxa).
  Analyse par cytométrie en flux (FACS Canto II) de la différenciation cellulaire
  Biochimie: Extractions de protéines, Dosage protéique Bradford et Western Blot.
  Biologie Moléculaire: Analyse de l'expression de gènes après extraction ARN, RT et qPCR (Stratagène MX3000P).

• Laboratoire Cellules Dendritiques et Plasticité Immunitaire (CNRS UMR 5239), Lyon - Assistante Ingénieur stagiaire (M1 Génétique et Biologie de la Cellule) (2mois)

  2009 - 2009 Projet: Étude de la régulation d’acteurs clés du métabolisme lipidique à partir du transcriptome de cellules multinuclées géantes générées in vitro en présence d’IL-17A avec ou sans IFN-γ afin d’explorer les voies de régulation empruntées par les MGC pour capturer et/ou synthétiser des lipides et assurer des fonctions reliées.
  
  - Étude bibliographique approfondie du métabolisme lipidique
  - Analyse transcriptomique de comparaison de profils d'expressions.
  
  - Compétences techniques acquises :
  Culture cellulaire: génération de cellules multinuclées géantes in vitro à partir de sang humain périphérique (purification de monocytes sur gradient Ficoll/Percoll, différenciation par stimulation de cytokines), contrôle phénotypique par immunomarquage à chaque stade de différenciation en cytométrie en flux (BD LSRII Flow Cytometer, logiciel d'acquisition DIVA et logiciel d'analyse FLOWJO).

• Sanofi Pasteur, Département R&D, Unité de Virologie, Marcy L'etoile - Technicienne de Recherche (6mois)

  2007 - 2008 Projet: Caractérisation de souches vaccinales dengue et de souches virales atténués par RT-qPCR et titrage microPFU.
  Culture cellulaire.
  Production de lysats cellulaires infectés (cellules Vero).
  Formation à la cytométrie en flux sur sytème GUAVA.
  Travail en environnement L2.
  Rédaction de rapports d'activité, Veille scientifique, Présentation des résultats en interne, Formation aux BPLs

• Laboratoire de Virologie et Pathologies Humaines (CNRS FRE 3011), Laennec, Lyon - Technicienne de recherche stagiaire (IPROB ESSEP 3) (11mois)

  2007 - 2007 Projet : Caractérisation de l’impact de l’infection de différentes souches humaines et aviaires du virus de la grippe sur l’ultrastructure moléculaire des domaines nucléaires des cellules humaines
  
  - Étude de localisation cellulaire de la protéine virale NP et de 3 protéines nucléolaires constitutives au cours du cycle infectieux par immunofluorescence.
  - Construction de souches virales mutantes pour la NP par génétique inverse
  - Étude de l'effet de ces mutations sur la localisation cellulaire des protéines constitutives du nucléole (IF) et sur la virulence des souches recombinantes (titrage viral)
  - Mise au point d'un protocole d'ARN interférence pour étudier l'effet sur le cycle infectieux de l'inhibition de l'expression d'une protéine nucléolaire.
  
  Compétences techniques acquises:
  - Culture cellulaire et virale: entretien des lignées cellulaires, cinétique d'infection, titrages viraux (Test HA et plage de lyse), transfections/nucléoporations (amaxa) d'ADN plasmidique, immunofluorescence, production de virus recombinants par génétique inverse, Travail en laboratoires confinés type L2 et L3.
  
  - Biologie moléculaire: Clonage (PCR, mutagénèse dirigée), RT-qPCR (7500 Applied Biosystem).

Formations

• Université Catholique De Lyon (Lyon)

  Lyon 2010 - 2011

• Université Claude Bernard

  Lyon 2008 - 2010 Master Recherche "Génétique Fonctionnelle et Pathologie de la Cellule"

• Université Catholique De Lyon (Lyon)

  Lyon 2006 - 2007

• Université Claude Bernard Lyon 1

  Villeurbanne 2003 - 2006 Licence Biologie des Organismes et des Populations

Réseau

• Alain ASTGEN

• Artur DE FREITAS RIBEIRO

• Jérémy FORGET

• Marion ROUXEL

• Noémie VENTAVOLI

• Renaud JASNOWSKI

• Romain PELLETIER

• Thomas VALENTIN

• Vanessa ROSSINY

• Ying ZHU