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Marie-Céline RAMBERT

BRIE COMTE ROBERT

En résumé

Techniques de biologie cellulaire : Dissection et mise en culture de cellules primaire humaines, culture de lignées cellulaires, transfection et mise en présence d'inducteurs
Imagerie calcique de fluorescence
Screening, fluorescence automatisée
Techniques de biologie moléculaire : Extraction d’ARN, minipréparation, RT-PCR, SDS-PAGE, électrophorèse en gel d’agarose, Western-blot

Immunologie, hormonologie
Immuno-hématologie
Électrophorèse capillaire
Immunofixation
Biochimie
Hématologie
Hémostase, coagulation
Bactériologie
HPLC
Procréation médicalement assistée

Connaissances en certification : GBEA (Guide de Bonne Exécution des Analyses), qualification bioqualité, préparation ISO 15189, ISO 9001, ISO 14001, OHSAS 18001, formation HSE (Hygiène Sécurité et Environnement) “biosécurité en confinement L2”

Travail sous PSM (Poste de Sécurité Microbiologique), travail en laboratoires L1 et L2

Chimie analytique, chimie organique, chimie des solutions, chromatographie, enzymologie, spectrométrie, droit, gestion

Langues : Anglais scientifique et technique maîtrisé, allemand scolaire, notion d’italien

Informatique : Pack Office, Image Master, Origin, Simple PCI, Prolam, Byg, Internet

Développer un projet scientifique : déterminer une problématique, définir et adapter les moyens,
proposer, établir, coordonner et réaliser les expériences,
valider, rédiger et transmettre les résultats

Communication : animer un groupe de travail,
présenter un projet

Qualités personnelles : rigueur, organisation, méthode, adaptabilité, autonomie, esprit de synthèse,
motivation, persévérance

Entreprises

  • Université Paris 6

    maintenant

  • BioVSM (plateau technique) - Technicienne de laboratoire

    2010 - maintenant Formation Beckman Coulter - DXI 600/800

    Immunologie, hormonologie : DXI 600, Beckman Coulter (150 analyses/jour), Vidas, BioMérieux (50 analyses/jour)
    Electrophorèse capillaire : Hydrasys, Sébia (7 analyses/jour)
    Immunofixation : Hydragel 2-4 IF, Hydrasys, Sébia (2 analyses/jour)
    Biochimie : Vitros 350 Chemistry System, Ortho-Clinical Diagnostic (150 Analyses/jour)
    Hématologie : LH 500, Beckman Coulter (150 analyses/jour)
    Hémostase, coagulation : ACL 9000, Instrumentation Laboratory France (50 analyses/jour)
    Bactériologie : Ensemencement, lecture, antibiogrammes (50 analyses/jour) ; Vitek, BioMérieux

  • LAM Cohen-Zaccarini - Technicienne de laboratoire

    2007 - 2010 Formation Sébia, Capillarys/Minicap - interprétation des profils

    Techniques de biologie moléculaire : PCR en temps réel (20 analyses/jour), TaqMan 48, Roche Diagnostics
    Immunologie, hormonologie : Cobas 6000, Roche Diagnostics (400 analyses/jour);
    Modular, Roche Diagnostics (900 analyses/jour) ; Architect, Abbott (400 analyses/jour); Axsym, Abbott (300 analyses/jour); Liaison, Diasorin (130 analyses/jour)
    Immuno-hématologie : Autovue Innova, Ortho Clinical Diagnostics (120 analyses/jour)
    HPLC : Variant II Turbo, Bio-Rad (100 analyses/jour); D-10, Bio-Rad (5 analyses/jour)
    Electrophorèse capillaire : Minicap, Sébia (35 analyses/jour)
    Immunofixation : Hydragel 4 IF, Hydragel 4 Urine profil(e), Hydrasys, Sébia (15 analyses/jour)

  • SANOFI-AVENTIS - Cadre de laboratoire, convention de stage

    Paris 2007 - 2007 Laboratoire de pharmacologie moléculaire, Département Lead Identification Technologies, Centre de Recherche Vitry-Alfortville (94)

    Projet et mémoire de M2 : Recherche et caractérisation de nouveaux agonistes d'un canal, cible de médecine interne

    Techniques de biologie cellulaire : Dissection et mise en culture de neurones de DRG de rats, culture primaire humaines, culture de lignées cellulaires
    Imagerie calcique de fluorescence : Microscope inversé à fluorescence, Nikon
    Screening, fluorescence automatisée : FLIPR, Molecular Devices

  • INSERM - Ingénieur d’études, convention de stage

    PARIS 13 2006 - 2006 INSERM-747, Equipe d'accueil de signalisation cellulaire et pharmacologie du cartilage, Université Paris 5, UFR Biomédicale des Saints-Pères, Paris (75)

    Projet et poster de M1 : Etude de l’antagonisme cytokines/œstradiol dans les chondrocytes : effets de la pression en oxygène

    Techniques de biologie cellulaire : Culture primaire de chondrocytes, transfection et mise en présence d'inducteurs, culture de lignées cellulaires
    Techniques de biologie moléculaire : Extraction d’ARN, minipréparation, RT-PCR ; Light Cycler, Roche Diagnostics, SDS-PAGE, électrophorèse en gel d’agarose, Western-blot

  • LAM Millet-Marotte - Technicienne de laboratoire

    2002 - 2005 Stage de Procréation Médicalement Assistée, Naples, Italie
    Procréation médicalement assistée : Insémination Artificielle, FIV, ICSI

    Biochimie : Vitros 250 Chemistry System, Ortho-Clinical Diagnostic (200 analyses/jour)
    Hématologie : Argos et module 5-Diff, ABX (100 analyses/jour)
    Hémostase, coagulation : ACL 9000, Instrumentation Laboratory France (50 analyses/jour)
    Immunologie, hormonologie : Vidas, BioMérieux (50 analyses/jour)
    Bactériologie : Ensemencement, lecture, antibiogrammes (50 analyses/jour) ; Vitek, BioMérieux
    Procréation médicalement assistée : Insémination artificielle, FIV, ICSI

Formations

Réseau

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