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Robin RULLAUD

MONTPELLIER

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Compétences:

Scientifiques:
Biologie moléculaire : Stratégies de clonage, ingénierie génétique, séquençage, Genotypage (SSR, SNP)
Biochimie : Analyse et caractérisation de protéines, étude d'interactions protéines-protéines Microbiologie : Techniques de cultures bactériennes (en microplaques, erlenmeyer et fermenteur 1 et 2L)
Techniques analytiques: Chromatographies, Western Blot, Electrophorèses SDS PAGE, ELISA

Transversales :
Gestion de projet, Veille scientifique, Synthèse et présentations de résultats, Communication orale/écrite, Relation fournisseurs

Mes compétences :
Microbiologie
Expression de protéines
Chromatographie
Biologie moléculaire

Entreprises

  • ADNiD - Groupe Qualtech - Technicien R&D et production

    2016 - maintenant

  • INSERM U1051 - Institut des Neurosciences de Montpellier - Assistant Ingénieur

    2015 - 2015 Equipe "Génétique et Thérapie des cécités rétiniennes" - Expression et étude des interactions entre deux protéines de la matrice interphotoréceptrice dans le cadre de dystrophies maculaire vitelliformes

    - Mise en place de la stratégie de construction des différents vecteurs de clonage (PCR, Mutagenèse dirigée, design d'amorces, clonage,...)
    - Etude de la colocalisation et caractérisation des interactions entre différents partenaires protéiques (Immunomarquage, GST Pull Down, Western Blot,...)
    - Séquençage d'ADN de patients pour diagnostiquer la présence ou non de mutations caractéristiques d'une rétinite pigmentaire en s'appuyant sur les études cliniques réalisées.

  • Deinove - Ingénieur stagiaire

    Paris 2014 - 2014 Projet DEINOCHEM - "Optimisation et modifications d'enzymes pour la production de monoterpénoïdes chez Deinococcus"

    - Modification des vois métaboliques de Deinococcus par des méthodes de biologie moléculaire (Assemblage Gibson, PCR, mutagenèse dirigée)
    - Criblage des conditions optimales de production de composés d'intérêt par Deinococcus (cultures en erlenmeyer)
    - Analyse des composés produits par chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse

  • INRA - UMR Ingénierie des Agropolymères et technologies émergentes - Ingénieur stagiaire

    2012 - 2013 Stage de 5 mois
    Expression, purification et caractérisation de cytochromes P450

    Compétences acquises :
    - Criblage de conditions optimales d'expression de cytochromes P450 chez E.coli (microplaques de cultures)
    - Cultures d'E.coli en fermenteur 1L
    - Purification par chromatographie d'affinité (Histrap) et échangeuse d'ions (Q XL Sepharose)
    - Test fonctionnels par liaison au monoxyde de carbone
    - Caractérisation par SDS PAGE (connaissance pratique de base en électrophorèse 2D)

  • Centre de Génomique Fonctionnelle de Bordeaux - Technicien de Laboratoire (stagiaire)

    2012 - 2012 Stage d'1 mois et demi
    Réalisation d'un protocole de purification des phosphopeptides par HPLC

    Compétences acquises :
    - Analyse et purification de phosphopeptides : HPLC, Spectrométrie de masse, Dosage Lowry, Bradford et BCA.
    - Rédaction d'un protocole pour une utilisation en routine

  • Institut de Biochimie et Génétique Cellulaire - Technicien de recherche (stagiaire)

    2011 - 2011 Stage de 2 mois
    Etude de l'interaction entre les protéines pro et anti apoptotique Bax et BclxL

    Compétences acquises:
    Biochimie : Extraction de protéines, immunoprécipitation, SDSPAGE, Western Blot
    Biologie Cellulaire : Centrifugation différentielle
    Microbiologie : Préparation et entretien de cultures de S.saccaromyces et E.coli
    Biologie moléculaire: PCR, clonage, extraction d'ADN plasmidique (miniprep)

  • Institut de Biochimie et Génétique Cellulaire - Technicien de recherche (stagiaire)

    2010 - 2010 Stage de 2 mois
    Etude de l'interaction entre les protéines pro et anti apoptotique Bax et BclxL

    Compétences acquises:
    Biochimie : Extraction de protéines, immunoprécipitation, SDSPAGE, Western Blot
    Biologie Cellulaire : Centrifugation différentielle
    Microbiologie : Préparation et entretien de cultures de S.saccaromyces et E.coli
    Biologie moléculaire: PCR, clonage, extraction d'ADN plasmidique (miniprep)

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