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Sandrine ARRUFAT

PARIS 13

En résumé

Institut Curie - Plateforme de pathologie expérimentale

Mes compétences :
Biologie
Biologie moléculaire
Clonage
Cytogénétique
extraction
extraction d'ARN
Génomique
Pathologie
PCR
Synthèse

Entreprises

  • Inserm - Assistante ingenieur

    PARIS 13 2014 - maintenant UMR-S910 – Unité de Génétique médicale et Génomique fonctionnelle
    Equipe Physiopathologie du développement cardiaque

    · Culture de lignées cellulaires: cellules cancéreuses humaines; cellules interstitielles de valve cardiaque de porc (VIC); cellules HEK.
    · Etude de l’expression de gènes impliqués dans la transition épithélio-mésenchymateuse (TEM) par qPCR sur Light Cycler 1.5
    · Expérimentation animale: Entretien d’une colonie de souris transgéniques et maintien des bonnes conditions d’hébergement; Gestion des souris (sevrage et tenue d’un registre); Dissections; Injections, Prélèvements d’embryons de E9.5 à E17.5; Biopsies de queues.
    · Génotypage de souris par PCR.
    · Histologie de tissus embryonnaires de souris : Inclusion en paraffine et coupes sur microtome ; Coupes au cryostat sur tissus congelés et coloration HE.
    · Réalisation de techniques d’immuno-marquage par immunofluorescence sur cellules.
    · Modification du gène Nipbl (syndrome de Cornélia De Lange) par la technique de CRISPR-Cas9.

  • Institut Curie - Paris - Technicienne de laboratoire

    PARIS 5 2006 - 2014 Plateforme de Pathologie Expérimentale (Depuis mars 2013)

    •Réalisation des techniques classiques d’anatomo-pathologie sur xénogreffes, tissus murins et humains :
    macroscopie, inclusion en paraffine, coupes sur microtome.
    •Réalisation de Tissus Micro Arrays (TMA)
    •Mise au point d’anticorps en immuno-histochimie par technique manuelle et sur automate Autostainer.
    •Mise au point de RNA FISH sur coupes en paraffine.
    •Cultures de lignées cellulaires en vue de la réalisation de cell-bloc et de xénogreffes.
    •Utilisation du numériseur de lames PHILIPS et du logiciel d’analyse IMS.

    Laboratoire de Cytogénétique & Génétique Somatique (Avr 2007 à mars 2013)

    •Cultures cellulaires primaires sur différents types de prélèvements (tumeurs du rein, des tissus mous,
    moelles, ganglions et sangs constitutionnels) et entretien de lignées.
    •Recherche diagnostic Ataxie Télangiectasie, fragilités chromosomiques type Fanconi et échanges entre
    chromatides soeurs sur prélèvements sanguins.
    •Réalisation de coupes de tumeurs congelées sur cryostat Micron HM550.
    •Réalisation de caryotypes sur logiciel BANDVIEW 5.0 de Applied Spectral Imaging.
    •Réalisation de FISH ADN sur coupes à congélation, paraffine ou étalements cellulaires à partir de sondes
    commerciales et de sondes « home made ».
    •Lyse de Globules rouges / Extraction d’ADN génomique / WGA
    •Extraction d’ADN génomique / Réalisation de CGH Array sur puces Integragen (4000 BACs) et puces
    NimbleGen (4*72 000 probes) pour diagnostic de cancer du rein, mélanome de la choroïde et
    liposarcomes
    •Diagnostic des tumeurs rhabdoïdes par CGH Array, MLPA, génotypage et séquencage.
    •Réalisation de diagnostic prénatal pour les tumeurs rhabdoïdes.
    •Extraction d’ARN, PCR Taqman pour recherche de transcrits de fusion.
    •Utilisation extracteur automatique d’ADN : FUJI 610

    Laboratoire d’hématologie (Juil 2006 à avr 2007)

    •Cytologie : Utilisation du XE2100 de Roche pour numération, analyse de frottis sanguin et réalisation de
    formules leucocytaires.
    •Hémostase : Analyse des maladies hémorragiques (dosage des facteurs des voies intrinsèques et
    extrinsèques de la coagulation) et utilisation du BCS XP de Dade Behring.

  • Hôpital Saint Louis - APHP - Paris - Technicienne de laboratoire

    2006 - maintenant •Traitement de prélèvements sanguins : Sédimentation et lyse des hématies puis obtention de culots secs de globules blancs en vue d’extraction d’ADN et d’ARN.
    •Recherche de translocation (bcr-abelson) par technique PCR
    •Etude de chimérisme
    •Analyse de fragments PCR sur séquenceur Alf Express de Pharmacia

  • CRP Beauvoir - Juré d'examen

    2005 - 2012 Le CRP Beauvoir à Evry est un centre de reclassement professionnel de personnes handicapées avec une cession de technicien de laboratoire.
    Cette expérience consiste, une fois par an, à faire partie du jury d'examen pour les épreuves finales de TP de microbiologie des candidats.

  • Biométhodes - Technicienne supérieure de laboratoire

    2001 - 2005 - Nombreuses manipulations de mutagénèse dirigée et de synthèse de gènes nécessitant l’utilisation de nombreuses techniques classiques de biologie moléculaire et bactériologie : sous clonage, PCR, purification et extraction d’ADN, différentes méthodes de screening…
    - Utilisation logiciel d’alignement et lecture de séquences d’ADN (Seqman)
    - Dosage de protéines et visualisation sur gel 10% tris-HCl, purification sur colonne.
    - Utilisation du robot Q-Pix de Genetix pour le repiquage de colonies bactériennes.
    - Culture cellulaire : entretien de lignées cellulaires.

  • Genset Oligos - Technicienne supérieure de laboratoire

    1998 - 2001 Genset oligos était une société de synthèse d'ADN
    Contrôle qualitatif et quantitatif d’ADN synthétique :
    - Migration des oligonucléotides sur gel de polyacrilamide révélé sous U.V.
    - Lecture des absorbances sur un spectrophotomètre U.V.
    - Réajustement en concentration et conditionnement des oligos sur automate GENESIS.

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

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