Sandrine ARRUFAT

En résumé

Entreprises

• Inserm - Assistante ingenieur

  PARIS 13 2014 - maintenant UMR-S910 – Unité de Génétique médicale et Génomique fonctionnelle
  Equipe Physiopathologie du développement cardiaque
  
  · Culture de lignées cellulaires: cellules cancéreuses humaines; cellules interstitielles de valve cardiaque de porc (VIC); cellules HEK.
  · Etude de l’expression de gènes impliqués dans la transition épithélio-mésenchymateuse (TEM) par qPCR sur Light Cycler 1.5
  · Expérimentation animale: Entretien d’une colonie de souris transgéniques et maintien des bonnes conditions d’hébergement; Gestion des souris (sevrage et tenue d’un registre); Dissections; Injections, Prélèvements d’embryons de E9.5 à E17.5; Biopsies de queues.
  · Génotypage de souris par PCR.
  · Histologie de tissus embryonnaires de souris : Inclusion en paraffine et coupes sur microtome ; Coupes au cryostat sur tissus congelés et coloration HE.
  · Réalisation de techniques d’immuno-marquage par immunofluorescence sur cellules.
  · Modification du gène Nipbl (syndrome de Cornélia De Lange) par la technique de CRISPR-Cas9.

• Institut Curie - Paris - Technicienne de laboratoire

  PARIS 5 2006 - 2014 Plateforme de Pathologie Expérimentale (Depuis mars 2013)
  
  •Réalisation des techniques classiques d’anatomo-pathologie sur xénogreffes, tissus murins et humains :
  macroscopie, inclusion en paraffine, coupes sur microtome.
  •Réalisation de Tissus Micro Arrays (TMA)
  •Mise au point d’anticorps en immuno-histochimie par technique manuelle et sur automate Autostainer.
  •Mise au point de RNA FISH sur coupes en paraffine.
  •Cultures de lignées cellulaires en vue de la réalisation de cell-bloc et de xénogreffes.
  •Utilisation du numériseur de lames PHILIPS et du logiciel d’analyse IMS.
  
  Laboratoire de Cytogénétique & Génétique Somatique (Avr 2007 à mars 2013)
  
  •Cultures cellulaires primaires sur différents types de prélèvements (tumeurs du rein, des tissus mous,
  moelles, ganglions et sangs constitutionnels) et entretien de lignées.
  •Recherche diagnostic Ataxie Télangiectasie, fragilités chromosomiques type Fanconi et échanges entre
  chromatides soeurs sur prélèvements sanguins.
  •Réalisation de coupes de tumeurs congelées sur cryostat Micron HM550.
  •Réalisation de caryotypes sur logiciel BANDVIEW 5.0 de Applied Spectral Imaging.
  •Réalisation de FISH ADN sur coupes à congélation, paraffine ou étalements cellulaires à partir de sondes
  commerciales et de sondes « home made ».
  •Lyse de Globules rouges / Extraction d’ADN génomique / WGA
  •Extraction d’ADN génomique / Réalisation de CGH Array sur puces Integragen (4000 BACs) et puces
  NimbleGen (4*72 000 probes) pour diagnostic de cancer du rein, mélanome de la choroïde et
  liposarcomes
  •Diagnostic des tumeurs rhabdoïdes par CGH Array, MLPA, génotypage et séquencage.
  •Réalisation de diagnostic prénatal pour les tumeurs rhabdoïdes.
  •Extraction d’ARN, PCR Taqman pour recherche de transcrits de fusion.
  •Utilisation extracteur automatique d’ADN : FUJI 610
  
  Laboratoire d’hématologie (Juil 2006 à avr 2007)
  
  •Cytologie : Utilisation du XE2100 de Roche pour numération, analyse de frottis sanguin et réalisation de
  formules leucocytaires.
  •Hémostase : Analyse des maladies hémorragiques (dosage des facteurs des voies intrinsèques et
  extrinsèques de la coagulation) et utilisation du BCS XP de Dade Behring.
  

• Hôpital Saint Louis - APHP - Paris - Technicienne de laboratoire

  2006 - maintenant •Traitement de prélèvements sanguins : Sédimentation et lyse des hématies puis obtention de culots secs de globules blancs en vue d’extraction d’ADN et d’ARN.
  •Recherche de translocation (bcr-abelson) par technique PCR
  •Etude de chimérisme
  •Analyse de fragments PCR sur séquenceur Alf Express de Pharmacia

• CRP Beauvoir - Juré d'examen

  2005 - 2012 Le CRP Beauvoir à Evry est un centre de reclassement professionnel de personnes handicapées avec une cession de technicien de laboratoire.
  Cette expérience consiste, une fois par an, à faire partie du jury d'examen pour les épreuves finales de TP de microbiologie des candidats.

• Biométhodes - Technicienne supérieure de laboratoire

  2001 - 2005 - Nombreuses manipulations de mutagénèse dirigée et de synthèse de gènes nécessitant l’utilisation de nombreuses techniques classiques de biologie moléculaire et bactériologie : sous clonage, PCR, purification et extraction d’ADN, différentes méthodes de screening…
  - Utilisation logiciel d’alignement et lecture de séquences d’ADN (Seqman)
  - Dosage de protéines et visualisation sur gel 10% tris-HCl, purification sur colonne.
  - Utilisation du robot Q-Pix de Genetix pour le repiquage de colonies bactériennes.
  - Culture cellulaire : entretien de lignées cellulaires.

• Genset Oligos - Technicienne supérieure de laboratoire

  1998 - 2001 Genset oligos était une société de synthèse d'ADN
  Contrôle qualitatif et quantitatif d’ADN synthétique :
  - Migration des oligonucléotides sur gel de polyacrilamide révélé sous U.V.
  - Lecture des absorbances sur un spectrophotomètre U.V.
  - Réajustement en concentration et conditionnement des oligos sur automate GENESIS.

Formations

Réseau

• Frédéric CEDRONE

• Gaelle PIERRON

• Hélène CHAUTARD

• Isabelle BOUILLON

• Isabelle GAGNON

• Laurent MESTA

• Marie DE LUMLEY

• Muriel VENUTOLO

• Pascal PUGNIERE

• Zakir HAMOUCHE