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Solange VILLETTE

Paris

En résumé

Diplôme d'ingénieur de recherche agronome, spécialisé dans les biotechnologies, amélioration du végétale obtenu en 2009, puis un diplôme de doctorat en Biologie moléculaire et cellulaire de l'Université de Sherbrooke (PhD), Canada, dans le domaine du végétal, obtenu en 2015.

Je suis actuellement à la recherche d'un travail dans la recherche, et je souhaite intégrer une équipe de recherche dynamique pour y apporter mes compétences. Au cours de ces années de doctorat au Canada, j'ai développé plusieurs aptitudes :
Techniques des laboratoires pour la culture cellulaire et de plantes en pots
Techniques de clonage et de biologie moléculaire
Transformation de levures
Analyse bio-informatique et statistiques
Techniques de biotechnologies végétales (protoplastes, culture in vitro)
Optimisation de protocoles
Participation aux réunions du laboratoire et celles du département de Biologie
Analyse et présentation des résultats de recherche dans le département de Biologie et durant des congrès nationaux et internationaux
Gestion du matériel/appareils du laboratoire et des commandes associées
Formation et gestion d'étudiants stagiaires

Mes compétences :
Bio-informatique
Bioinformatique
Biologie
Biologie moléculaire
Biology
Biotechnologies
Clonage
Cloning
Culture
Culture cellulaire
Culture in vitro
Microbiology
Molecular biology
Observations
Recherche
Techniques de biologie moléculaire
Communication
Gestion de projet

Entreprises

  • Ctifl - Ingénieur chargé de mission

    Paris 2018 - maintenant
  • Université de Sherbrooke - Doctorante

    Sherbrooke 2010 - 2015 Thèse sur la mort cellulaire programmée chez les végétaux.
    Doctorat de biologie molculaire et cellulaire.
    Intitulé de la thèse : Étude du rôle des thiorédoxines f dans la mort cellulaire programmée en réponse à divers stress abiotiques chez la plante modèle Arabidopsis thaliana.
    • Implication des thiorédoxines de type f dans la réponse aux stress oxydatif provoqués par les UV-C, le méthyl viologen et l'ABA (acide abscissique).
    • Rôle de la thiorédoxine f1 dans l'équilibre entre la synthèse/dégradation de l'amidon dans la plante.
    • Implication de BI-1 (Bax-Inhibitor 1) dans la réponse aux UV-C.

    Ce qui a été fait :
    - Analyse bioinformatique : design d'amorces, comparaison des différents gènes candidats
    - Stress abiotiques : exposition aux UV-C, traitement au methyl viologen (ou paraquat), traitement à l'acide abscissique, entre autre...
    - Stress biotiques : infection par Pseudomonas syringae
    - Techniques de biologie moléculaire (extraction d’ADN et d’ARN, PCR, réverse transcription, clonage et construction moléculaires, quantification par RT-qPCR de la variation d'expresison des gènes, quantification de l'amidon par coloration au lugol et avec le kit Megazyme, quantification de la chlorophylle, mesure de la MCP avec un conductimètre)
    - Technique de biotechnologies végétales (plantes en pot, culture in vitro, protoplastes, microbiologie)
    - Observation au microscope à épifluorescence
  • Université de Sherbrooke - Auxilaires de recherche

    Sherbrooke 2010 - 2014 Surveillances d'examen, corrections d'examen, démonstratrice de travaux pratiques en biologie végétale. Formation d'étudiants stagiaires aux techniques de biologie moléculaire et cellulaire. Gestion du matériel du laboratoire, des commandes et des projets des différents stagiaires. (Sherbrooke, Qc, (Canada))
  • Université de Tours (37200), laboratoire EA2106 biomolocules et biotechnologies végétales - Ingénieur de recherche (stagiaire M2 recherche)

    2009 - 2009 Sujet : « Mise au point de la transfection de protoplastes chez Catharanthus roseus : application à la localisation subcellulaire des transporteurs ABC de type WBC ».
    • Analyse bio-informatique
    • Techniques de biologie moléculaire (extraction d’ADN et d’ARN, PCR, reverse transcription, clonage et construction moléculaires)
    • Technique de biotechnologies végétales (protoplastes, culture in vitro, microbiologie)
    • Observation des protéines de fusion au microscope à épi-fluorescence (construction des vecteurs avec la séquence protéique et la yfp, ou yellow fluorescent protein)

    Ce qui a été fait :
    - Mise au point du protocole de Shen pour les cellules de Catharanthus roseus.
    - Sélection de 9 WBC parmi les 29 membres, suite à l'étude bio-informatique.
    - Optimisation du protocole : pour l'obtention d'une quantité d'ADN plasmidique pure, en vue de la transfection des protoplastes ; pour augmenter le taux de transfection, et donc pouvoir visualiser le signal de manière plus précise.
    - Localisation subcellulaire pour 4 clones, sur trois types cellulaires différents (cellules étiolées, cellules chlorophylliennes d'une culture cellulaire et cellules du mésophylle).
  • Laboratoire Clusius (Leiden, Pays-Bas) - Assistante ingénieur (stage à l'étranger)

    2008 - 2008 Interaction protéine-protéine, dont l'une des deux est connue, ORA59. Le but de ce stage était de constituer une banque d'ADN plasmidique de la séquence de l'autre protéine (inconnue) pour déterminer la partie protéique interagissant avec ORA59, par la transformation de levures.

    • Techniques des laboratoires pour la culture cellulaire (préparation des solutions et des milieux de croissance)
    • Techniques de clonage (PCR, digestion d’ADN, préparation de plasmides)
    • Transformation de levures (simples et doubles hybrides)

    Mon travail a servi à une étudiante en thèse de ce laboratoire.

    Visites et découvertes des Pays-Bas, ainsi que des cultures des différentes personnes présentent dans ce laboratoire au moment de ce stage (Brésil, Pakistan, Chine).
  • INSERM (Unité 542) à l'hopital Paul Brousse - Technicienne de laboratoire (stage)

    2006 - 2006 Les études menées dans ce laboratoire portaient sur le Tgf-beta (Transforming growth factor beta). Le principe était de détecter cette molécule dans le milieu de culture en vue de prédire la présence ou non d'un cancer des reins.

    Ce que j'ai fait:
    Techniques des laboratoires pour la culture de cellules, entretiens des lignées, comptage de cellules, expression des protéines et dosage de molécules…

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