Mes compétences :
Biochimie
Biologie
Biologie moléculaire
Cytométrie
Cytométrie en flux
Ecophysiologie
Écotoxicologie
Immunologie
Entreprises
UMR 5119 Ecosym, Équipe Adaptation Écophysiologique et Ontogenèse, Université Montpellier 2
- Maître de Conférence
2012 - maintenant
Centre d'Etudes et de Recherche sur le Médicament de Normandie (CERMN) & UMR BioMEA, Caen
- Chercheur Post-doc en écotoxicologie des médicaments
2011 - 2012>>Objectif : Étudier la toxicité d’une variété de résidus pharmaceutiques sur des espèces dulçaquicoles et marines – programme ANR Pharm@ecotox
Réalisations
• Mise en oeuvre de bioessais standardisés sur microalgues et daphnies :
- mise en route de cultures en continue (Pseudokirchneriella subcapitata, Daphnia magna)
- tests aigus : test d’inhibition de la mobilité de D. magna (norme ISO 6341 – 1996)
- tests chroniques : test d’inhibition de la croissance algale de P. subcapitata sur 72h, test d’inhibition de reproduction de D. magna sur 21j (OCDE 211 – 1998)
• Développement de nouveaux bioessais sur modèles marins : cultures cellulaires d’hémocytes d’ormeau, test d’inhibition de croissance de microalgues marines
• Obtention de données d’écotoxicité de type réglementaire sur de nouvelles substances pharmaceutiques
2008 - 2011>>Objectif 1 : Évaluer les effets immunotoxiques de la présence de PCBs aux îles Kerguelen chez la truite commune (Salmo trutta) – programme ANR RISKER.
Réalisations
• Organisation et participation à une campagne scientifique de 5 mois en milieu isolé (Terres Australes et Antarctiques Françaises, TAAF)
• Analyse de paramètres immunitaires (sang, rein antérieur) en cytométrie en flux (BD FACScan) : cellularité, viabilité cellulaire (IP), phagocytose, apoptose (IOPRO-1), flambée oxydative, production de ROS (DCFH-DA), thiols (CMFDA), activité estérases (FDA), cycle cellulaire.
>>Objectif 2 : Analyser les effets immunotoxiques des effluents municipaux de la ville de Laval sur la moule d’eau douce Elliptio complanata.
Réalisations
• Expérimentation in situ : mise en place d’une expérience de caging en rivière
• Analyse de paramètres immunitaires en cytométrie en flux (BD FACSCalibur) : viabilité cellulaire (IP), cellularité, phagocytose, activité cytotoxique NK-like, activité bactéricide (lysosyme)
>>Objectif 3 : Phénotyper les cellules circulantes (hémocytes) chez la moule Mytilus edulis.
Réalisations
• Recherche de motifs cellulaires jouant un rôle dans l’immunité : récepteur à interleukines (CD25, CD122, CD121), récepteur toll-like (TLR4), intégrines (CD29), facteur d’adhésion cellulaire (CD34) et lectines.
• Immunomarquage et analyse en cytométrie en flux (BD FACSCalibur)
• Mise en oeuvre d’une démarche qualité sur une plateforme de cytométrie en flux (calibration du cytomètre, gestion du planning d’utilisation et d’entretien)
Ifremer, Centre de Nantes
- Chercheur Post-doc en écotoxicologie/écophysiologie
2007 - 2008>>Objectif : Étudier les réponses biologiques de trois espèces de mollusques bivalves (Mytilus edulis, Scrobicularia plana et Dreissena polymorpha) à la présence de pesticides le long d’un continuum milieu continental-milieu marin en estuaire de Vilaine – programme ANR ECODYN.
Réalisations
• Gestion de la campagne de prélèvement en estuaire de Vilaine
• Analyse de paramètres physiologiques :
- statut reproducteur (détermination du genre, teneur en vitelline, stade reproducteur)
- métabolisme oxydatif (catalase, SOD, peroxydation des lipides)
- détoxication cellulaire (act. BPH/CYP1A, metallothionéines)
- métabolisme des neurotransmetteurs (AchE)
- détermination de la stabilité des membranes lysosomales sur cellules vivantes (rétention au RN)
- statut reproducteur (détermination du genre, teneur en vitelline, stade reproducteur)
• Développement d’une méthode moléculaire de détermination du genre chez Mytilus edulis
Institut de Radioprotection et de Sûreté Nucléaire, Cherbourg-Octeville
- Doctorante, Université de Caen-Basse-Normandie
2003 - 2006>>Objectif : Étudier l’impact des radionucléides rejetés par les installations nucléaires du nord Cotentin sur l’huître creuse Crassostrea gigas.
Réalisations
• Clonage et séquençage : mise en ligne de 8 nouvelles séquences dans Genbank
• Mise en œuvre d’une étude de terrain sur plusieurs stations (4 sites, 18 mois)
• Expérimentation in vivo (animal entier) et in vitro (cultures cellulaires)
• Analyse de l’expression de gènes en PCR temps réel :
- cycle cellulaire (p53, p73, p21)
- métabolisme oxydatif (SOD)
- détoxication cellulaire (CYP450, MT, MDR)
- chaperons moléculaires (HSP70, HSP90)
• Manipulation de radionucléides (respect des règles d’H&S)
• Analyse de la réponse cellulaire aux rayonnements ionisants (irradiations externes / contaminations internes)
• Dosage de radionucléides en spectrométrie gamma
