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Marcelina STAROK

Toulouse

En résumé

• Gestion de projets innovants : conception, élaboration, mise en place de projets collaboratifs, analyse des résultats, rapport
• Connaissance du milieu industriel : propriété intellectuelle, GMP (BPF), GLP, normes de qualité, gestion d’innovation, formation & supervision
• Expérience internationale : travail dans des équipes multiculturelles (Pologne, France, Allemagne, Irlande, Etats-Unis)
• Compétences linguistiques : polonais – maternel, français – courant, anglais – professionnel (TOEIC 990/990), allemand – notions
• Communication : présentations orales en congres, animation de réunions, rédaction technique / scientifique
• Techniques de laboratoire :
o Biologie cellulaire et moléculaire : culture de lignées cellulaires mammifères, bactériales et champignons, test de viabilité et de prolifération, ECIS, CELISA, PCR, RT-PCR, clonage, extraction d’ADN
o Biochimie et Biophysique : SPR (Biacore T100), SPT, DLS, ELISA, QCM-D, liposomes, microscopie confocale (FRAP), UV-Vis, fluorométrie, SDS-PAGE, purification de protéines, western blot



Mes compétences :
Western Blotting
SDS
Intellectual Property Law
ELISA
SPT
Rédaction scientifique
ECIS
PCR
Biologie moléculaire
Rédaction technique
FRAP
Culture cellulaire
Clonage
Biacore
Tyrosine kinase
Liposomes
Single Particle Tracking
Cancérologie
Bonnes Pratiques de Fabrication
Gestion de projet
Recherche scientifique
Propriété intellectuelle
Network Access Control

Entreprises

  • Université Paul Sabatier - Chercheur visiteur

    Toulouse 2014 - 2014 Projet collaboratif
    Techniques: Single Particle Tracking (SPT)

  • Regensburg University, Allemagne - Chercheur visiteur

    2013 - 2014 Projet collaboratif
    Techninques: ECIS, cours de modelling moleculaire avec logiciel SYBYL

  • Université de Technologie de Compiègne - Thèse de doctorat Biotechnologie

    Compiègne 2011 - 2014 Titre de la thèse : Études de l’effet des polyphenols naturels sur l’activité de l’EGFR par utilisation de modèles de membranes biomimétiques et des lignées cellulaires
    Projet réalisé au sein du réseau européen ITN Marie Curie Actions CHEBANA

    Missions : travail indépendant sur le projet scientifique incluant : recherches bibliographiques, la planification et la réalisation d'expériences, analyses de données, communication des résultats sous la forme de présentations orales lors des réunions de groupe, réunions de réseau international et de congrès internationaux, rapports écrits régulièrement pour le groupe local et pour le réseau international, rédaction d’articles scientifiques, mise en place de projets secondaires en collaboration avec des partenaires interdisciplinaires

    Techniques : Culture cellulaire (A431, CHO-K1, MDA-MB-231), reconstitution de protéine dans des modèles membranaires, liposomes, ELISA, SPR (BICORE), fluorométrie, spectrophotométrie, DLS, microscopie confocale (FRAP), ECIS, SPT

  • University of Idaho, ID, USA - Stagiaire

    2011 - 2011 Stagiaire au Department of Plant, Soil & Entomological Sciences

    Projet : Ubiquitination in vitro du facteur de transcription NAC1 de tomate

    Techniques : PCR, électrophorèse ADN, clonage, expression et purification de protéines, western blot

  • University College Cork, Ireland - Stagiaire

    2010 - 2010 Stage de master au School of Biochemistry and Cell Biology

    Techniques : SDS-PAGE, quantification de protéines

  • ABBOTT LABORATORIES - Opérateur

    Rungis 2008 - 2009 Opérateur dans le département de production

    Missions : fabrication de dispositifs medicaux, connaissance des normes BPL et BPF, la politique de laboratoire, la procédure de la salle blanche, de sécurité et de confidentialité, formation de nouveaux employés dans la fabrication

Formations

  • Centrum Nauki I Biznesu Zak

    Lublin 2009 - 2011 Diplôme de technicienne (BAC+2)

  • Université De Maria Curie Sklodowska

    Lublin 2005 - 2011 Master

    Spécialisation en biochimie et enseignement de biologie

    Projet de Master : Analyse moléculaire du promoteur du gène de laccase de Cerrena unicolor

    Techniques : Extraction ADN & ARN, PCR, RTPCR, électrophorèse ADN, quantification de protéines, SDS-PAGE, culture de champignons

Réseau

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