2010 - 2013Développement d’un modèle de rétine pathogène à partir de cellules iPS de patients
Son utilisation pour la mise au point d’une thérapie génique des dégénérescences rétiniennes
Unité INSERM U583
- CDD J. Chercheur
2006 - 2009Le cycle visuel et sa régulation dans la mise au point de thérapies de la maladie de Stargardt
Techniques maîtrisées : gestion de colonies, obtention de lignées pures, caractérisation du cycle visuel (Electrorétinogramme, Electrorétinogramme d'adaptation, phototoxicité, éblouissement), microdissection de la rétine et de l'épithélium pigmentaire, extraction d'ARN et de protéines, marquage bétagal, clonage en vecteur d'expression, injections intravitréennes, histologie en vibratome.
Encadrement : 2 étudiantes de M1 (2006 et 2009)
1 doctorant (2007 - 2010)
Unité CNRS UMR8125
- Post-doctorante
2002 - 2005Mise au point d'une immunothérapie antitumorale chez la souris par injection(s) de cellules mourantes
Techniques maîtrisées : culture cellulaire, transfection et sélection de lignées stables, étude de l'apoptose par FACS, immunohistochimie et western blot, injection de cellules cancéreuses à des souris immunocompétentes et déprimées, suivi de la pousse tumorale, prélèvement et mise en culture de tumeurs induites, injections intramusculaires, intraplantaires et intraveineuses, prélèvement des ganglions poplitées.
Encadrement : 2 étudiants de M2 (2003 - 2004 et 2004 - 2005).
CERTO, Centre de Recherche et de Thérapie en Ophtalmologie
- M2 puis Doctorante
1998 - 2002M2 puis Thèse. Étude de l'apoptose au cours du développement de la rétine chez la souris
bourse MRT.
Thèse soutenue le 6 décembre 2002, mention très honorable avec félicitations du jury.
Techniques maitrisées : Gestion de colonies murines contrôles et transgéniques (accouplements, sevrage et séparation des sexes, génotypage), prélèvements (organes thoraciques et abdominaux, embryons à partir de E10.5, microdissection de l'oeil à partir de E10.5), injections intrapéritonéales, inclusion et coupes (paraffine, cryostat), TUNEL et immunohistochimie sur paraffine, RT-PCR et clonage simple, séquençage.
Encadrement : 1 étudiante en M1 (1999)
1 BTS en alternance (2000 - 2002)
1 M2 (2001 - 2002)
CERTO, Centre de Recherche et de Thérapie en Ophtalmologie
- Maîtrise
1998 - 1998Clonage par microsatellites du gène rdy dont la mutation est responsable d'une dégénérescence précoce chez le rat RCS.
Techniques maîtrisées : PCR de microsatellites, gels d'acrylamide, gels d'agarose, fabriaction de sondes radioactives. Génotypage et phénotypage (sur coupes cryostat) des rats.
