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Marion DARNAUD

LYON

En résumé

COMPETENCES SCIENTIFIQUES ET TECHNIQUES
- Physicochimie
Tech. séparatives : Chromatographies d’affinité, d’exclusion stérique et par échange d’ions, HPLC.
Tech. analytiques : Spectrométrie LC-MS/MS, MALDI-TOF, spectroscopie par dichroïsme circulaire, technologies SPR et SER(R)S, titration calorimétrique isotherme.
- Biologie
Microbiologie : Culture de bactéries aérobies et anaérobies, criblage microbiologique (culture et séquençage métagénomique), et développement de tests bactériologiques en microplaque.
Moléculaire : Extraction d’ADN, d’ARN et de protéines, génotypage PCR, RT-qPCR, électrophorèse, clonage moléculaire, séquençage, transcriptomique, alignement et analyse de séquences nucléiques et protéiques, modélisation moléculaire, biostatistiques, synthèse d’ADN en phase solide, aptamères ADN, SELEX, ELONA.
Cellulaire : Culture de lignées cellulaires transformées et de cellules primaires, tests d’apoptose (Caspase-3/7, CK18Asp396, TUNEL), tests de prolifération et de survie (BrdU, WST-1).
Histologie: tissus cryopréservés et en paraffine, colorations vitales, immunomarquage histologique (immunohistochimie, immunofluorescence), FISH et microscopie à fluorescence.
Immunologie : ELISA, SDS-PAGE et Western blot.
- Expérimentation animale (murins) : Autorisations Niveau 1 et Chirurgie Expérimentale.
Expérimentation en animalerie conventionnelle, EOPS et isolateurs pour animaux axéniques et gnotrobiotiques. Axénisation. Mise en oeuvre et caractérisation par des tests fonctionnels spécifiques de modèles expérimentaux de maladies inflammatoires digestives, de syndrome métabolique, et de cancer (chimio-induit, xénogreffe, et lignée génétiquement modifiée). Etudes en cages métaboliques, scan IRM et photon imager. Prise de sang, gavage, injections par diverses voies d’administration (IV, IP, SC) et pose de pompes osmotiques. Dissection et prélèvements d’organes et de tissus.

BREVETS
- Faivre J, Vibert E, Darnaud M, Jamot L, Bréchot C, Amouyal P, Amouyal G. HlP/PAP protein and derivatives thereof for use in treating cancer. 2012. Patent No 12305877.8 – 2107.

PUBLICATIONS
- Moniaux N, Darnaud M, Garbin K, Dos Santos A, Guettier C, Samuel D, Amouyal G, Amouyal P, Bréchot C, Faivre J. The Reg3a lectin suppresses extracelular oxidative stress in a murine model of acute liver failure. PLoS ONE 2015 May;10(5).
- Darnaud M, Faivre J, Moniaux N. Targeting gut flora to prevent progression of hepatocellular carcinoma. J Hepatol. 2013 Feb;58(2):385-387.
- Moniaux N, Song H, Darnaud M, Garbin K, Gigou M, Mitchell C, Samuel D, Jamot L, Amouyal P, Amouyal G, Bréchot C, Faivre J. Human hepatocarcinoma-intestine-pancreas/pancreatitis-associated protein cures fas-induced acute liver failure in mice by attenuating free-radical damage in injured livers. Hepatology 2011;53(2):618-627.

REVUE
- Moniaux N, Darnaud M, Dos Santos A, Jamot L, Samuel D, Amouyal P, Amouyal G, Bréchot C, Faivre J. HIP/PAP, a new drug for acute liver failure. Med Sci (Paris). 2012 Mar;28(3):239-41.

LIVRE
- Creation of a DNA aptamer biosensor for the detection of heart failure. LAP, 2016. ISBN 978-3-659-82923-9.

COMMUNICATIONS SCIENTIFIQUES
- 8ème Journée Scientifique de la SFR Biosciences, Lyon, Juin 2015. A new animal facility in Lyon Gerland area to explore microbiome.
- European meeting on animal chlamydiosis, Paris, Sep 2015. Animal models and imaging competencies to improve chlamydial studies.
- Séminaire national d’imagerie optique in vivo, Paris, Sep 2015.
- AASLD’s 61st annual meeting, Boston, Massachusetts, US ; 29 oct.-2 nov. 2010.
- ILTS’s 16th annual international congress, Hong Kong, Chine; 16-19 juin 2010.
- EASL, Vienne, Autriche; 14-18 avril 2010.
- NSTI Nanotech, Santa Clara, Californie, US ; 20-24 mai 2007. Financement obtenu auprès de RSC Analytical Division et WestCHEM.
- SCIpharm, Edimbourg, UK ; 14-17 mai 2006. Poster primé.

Mes compétences :
Gestion de projet
Recherche et Développement
Biotechnologies
Biochimie
Microbiologie
Biologie moléculaire
Biologie cellulaire
Initiative
Innovation

Entreprises

  • BIOASTER - Chargée de Recherche, Unité Modèles Précliniques & Imagerie

    2014 - maintenant Création d'une unité de gnotobiologie, incluant des laboratoires de microbiologie et d'histologie.

    Développement de modèles pour l'étude du microbiote intestinal dans les indications telles que l'inflammation, le syndrome métabolique, les maladies immunes et neurologiques.
    Culture, isolation et identification de microbes intestinaux murins.

    Management de projets collaboratifs R&D et de co-développement technologique.

  • Inserm - Ingénieure de Recherche

    PARIS 13 2008 - 2014 J'ai intégré depuis juin 2008 l’unité mixte de recherche INSERM 785 - Université Paris 11, basée au Centre Hépato-Biliaire de l'hôpital Paul Brousse à Villejuif.

    Mes fonctions :
    Valorisation et développement de produits de biothérapie contre les maladies aiguës et chroniques du foie et du tube digestif, en partenariat avec des start-ups et des sociétés de biotechnologie.
    - Établissement de preuves de concept in vitro et pré-cliniques dans de nombreux modèles murins de maladies inflammatoires et tumorales.
    - Mise au point et validation de tests fonctionnels pour des phases cliniques 1 et 2, support technique au suivi biologique des essais cliniques.
    - Développement de nouvelles applications cliniques : imagerie médicale et suppléance bioartificielle hépatique.

    Coordination de programmes R&D impliquant un réseau collaboratif composé d’équipes de recherche universitaire, INSERM, INRA, CNRS et CEA, expertes dans les domaines de la recherche biomédicale, de la carcinogénèse, du métabolisme cellulaire, de la microbiologie, et de l’imagerie moléculaire du petit animal.

    Animation de réunions, reporting, rédaction des demandes de projets d’expérimentation animale et de brevets.

    Encadrement et formation d’Assistants Ingénieur, de Techniciens, et d’Etudiants en Doctorat, Master 2 et BTS.

    Gestion des budgets et des investissements en équipement pour la collectivité.

    Financements :
    - ANR RIB 2007
    - ANR BIOTECS 2008
    - FUI Medicen 2010
    - ANR TecSan 2011

  • Strathclyde University - Chercheur Doctorante

    2004 - 2008 Chercheur doctorante en Chimie au Centre for Molecular Nanometrology, Pure and Applied Chemistry, University of Strathclyde, Glasgow, UK.
    Doctorat supervisé par Prof. Duncan Graham et financé par WestCHEM.

    Création d’un nouveau test diagnostique de l’insuffisance cardiaque.
    - Conception de ligands oligonucléotidiques pour la détection spécifique de biomarqueurs peptidiques.
    - Développement de tests de diagnostic in vitro en spectroscopie UV/vis et Raman.

    Collaborations:
    D3 Technologies - Renishaw Diagnostics (SER(R)S); University of Edinburgh – School of Chemistry (FT-MS); University of Glasgow – Institute of molecular, cell and systems biology (CD, ITC): Strathclyde Institute of Pharmacy and Biomedical Sciences (Molecular Modelling).

    Compétences Managériales:
    Encadrement d’étudiants dans le cadre de leur projet de fin d’études et enseignement des travaux pratiques en laboratoire de chimie des 1ères aux 3èmes années.

  • Almirall Prodesfarma - Stagiaire Ingénieur

    PARIS 2004 - 2004 Mission: Investigation de diverses uridine-5’-diphospho-glucuronosyltransferases (UGTs) humaines intervenant dans le métabolisme de substrats médicamenteux.

    Réalisations:
    - Optimisation des conditions et automatisation des réactions enzymatiques.
    - Détermination des constantes cinétiques et développement de méthodes d’analyse par HPLC avec détection UV, Fluorescence et MS/MS.
    - Définition de familles d’UGTs à partir des propriétés métaboliques observées.

  • Henkel KGaA - Stagiaire Ingénieur

    2003 - 2003 Mission: Développement d’un traitement anti-corrosion pour les métaux usuels de l’industrie automobile.

    Réalisations:
    - Élaboration de bains, passivation des métaux, évaluation de la résistance à la corrosion avant et après peinture.
    - Suivi des essais depuis le laboratoire jusqu’à la chaîne de trempage automatique des clients.
    - Installation d’un pilote de recyclage des eaux de traitements et conception d’un manuel d’utilisation à l’usage des clients.

Formations

  • Strathclyde University (Glasgow)

    Glasgow 2004 - 2008 Molecular Biology, Analytical Chemistry, Raman Spectroscopy

    Supervisor: Duncan Graham, Funding: WestCHEM.

  • Ecole Nationale Supérieure De Chimie

    Montpellier 2001 - 2005 Chemistry, Biology, Health

    Engineer Degree Student

  • Lycée Jean Mermoz

    Montpellier 1999 - 2001 Scientific Preparatory Classes, option Technology-Physics-Chemistry (TPC)

    Ranked third at the Concours Communs Polytechniques, option TPC, 2001.

  • Cité Technique Les Catalins STL CLPI

    Montelimar 1996 - 1999 Chemistry

    Obtained with First Class Honours

    Sciences et Technologies de Laboratoire - Chimie de Laboratoire et Procédés Industriels

Réseau

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