Sabrina MAHÉO

En résumé

Entreprises

• CHU Rangueil - Recherche clinique

  2010 - maintenant • Gestion et mise en place d’une collection au sein du CRB cancer
  
  - Organisation et optimisation du recueil des échantillons
  - Validation des données cliniques, anatomo-pathologiques et biologiques
  - Contrôle morphologique des échantillons, préparation des produits
  dérivés (ADN, ARN, ADNc), contrôle qualité des ARNs.
  - Gestion des projets et collaborations relatives à la collection : rédaction
  et gestion des documents administratifs et techniques (consentement,
  procédure, fiche de traçabilité du prélèvement, facturation), recrutement
  des patients et saisie des données, mise en place et gestion de la
  logistique d’envoie des échantillons.
  - Participation technique à des projets de recherche clinique
  - Connaissance des BPCs et de la norme AFNOR NF S96-900
  
  • Développement et mise au point de techniques de diagnostic
  
  * Etude de la méthylation du promoteur de MGMT impliqué dans les glioblastomes
  - Extraction d’ADN génomique de tissus congelés et paraffinés
  - MS-HRM (Methyl Specific High Resolution Melting)
  - Participation à la démarche qualité NF ISO 1589 : rédaction des modes
  opératoires, protocoles et mise en place d’une traçabilité de l’analyse.
  - Formation des techniciennes en biologie moléculaire
  
  * Détection de mutation du gène EGFR impliqué dans le cancer du poumon
  - PCR ASO (Allele-specific-oligonucleotide)

• Protein biosensor - Stagiaire ingénieur R&D

  2006 - 2006 Sujet : « Solubilisation de la sous unité catalytique de la sérine/thréonine phosphatase 1 »
  Société Protein Biosensor, Bioincubateur midi-pyrénées, Toulouse (31)
  
  gène synthétique, clonage, production protéines recombinantes et purification

• CNRS - Ingénieur d'étude

  Paris 2006 - 2009 Ingénieur d’étude biologie moléculaire/biochimie
  Sujets :
  « Evolution moléculaire et production de la sous unité catalytique de la sérine/thréonine phosphatase 1 »
  « Mise au point d’un protocole de sélection d’aptamères »
  
  IPBS/CNRS-UMR5089, équipe biophysique cellulaire, Toulouse (31)
  
  •Biologie moléculaire :
  - Mutagénèse dirigée, gène synthétique, clonage
  - PCRs, Q-PCR
  - Southern blot, EMSA, purification acides nucléiques sur gel
  - SELEX (systematic evolution of ligands by exponential enrichment) sur support et en électrophorèse capillaire Beckman PA800.
  
  •Biochimie :
  - Production protéine en système procaryote (E.coli), eucaryote (baculovirus)
  - Détection (gel SDS-PAGE, Western Blot, Dot blot)
  - Purification (chromatographie phase inverse, échange d’ions, affinité, exclusion)

• IFREMER - Stagiaire

  Issy-les-Moulineaux 2003 - 2003 Sujet : « Séquençage d’ADN chloroplastique de diatomées »
  Centre IFREMER, laboratoire de production et biotechnologies des Algues, Nantes (44)
  
  culture, extraction ADN totaux, PCRs, séquençage

• Etablissement français du sang - Technicienne en produits sanguins

  2002 - 2002

• IFREMER - Stagiaire

  Issy-les-Moulineaux 2002 - 2002 Centre Ifremer de Brest, Laboratoire de Microbiologie et de Biotechnologie des Extrêmophiles

Formations

• Université Toulouse 3 Paul Sabatier

  Toulouse 2005 - 2006

• Université Lille 1 Sciences Et Technologies

  Villeneuve D'Ascq 2002 - 2005

• Université Brest Bretagne Occidentale

  Brest 2000 - 2002 analyses biologiques et biochimiques

Réseau

• Angela PATATIAN

• Audrey RUFFIEN-CISZAK

• Caroline DALLENNE

• Corinne HAZAN

• Imane CHAFCHAOUNI

• Jean-François ZIMMERMANN

• Laetitia FORTIN

• Laure DE HERCÉ

• Luc WASUNGU

• Pierre BARBEZ