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Tiphaine RUGGERI

ST-BLAISE

En résumé

Mes compétences :
Expérimentation animale
Cytométrie en flux
Bactériologie
ELISA
Virologie
Culture de lignées cellulaires
RT-PCR
Western Blot
technician management
Experimental Design
In Vitro Studies
Animal Experiments
Antibody
Bacteria
Collaborative implementation
DNA extraction
Immunology
Implementation of hygiene / safety
In Vivo Studies
PCR
Pneumonia
R&D
Spinal cord injury
Western Blotting
3D
LSR
Microsoft Office

Entreprises

  • Faculty of medicine - Scientist

    2018 - 2018 INSERM UMR-1235 ``the enteric nervous system in gut and brain
    (5 months) disorders''-
    PROJECT * Setting up on Organoids platform
    SKILLS
    * Student and technician management; Writing Standard Operating Procedures (SOPs);
    Experimental Design; Stock management; Progress Reports

    TECHNICS * In Vitro : Crypt isolation and culture (from human or mice gut samples), Enteroids and colonoids experiments, 3D culture, HEK 293 and Caco-2 cells culture (flask and hyperflask culture), Immunofluorescence, Experimentation in BSL-2 area

  • Institut de Recherche en Santé IRS-2, unités EA3826 et INSERM UMR-1232 (Nantes, France) - PhD student

    2013 - 2018 Etudes sur la validation du modèle murin SCI et immunothérapie par anti-PD1

    Gestion de projets ; Mise en place de collaboration ; Présentation à l’international ; Mise en place de la réglementation hygiène/sécurité/animale ; Conception et réalisation d’expérimentations animales ; Management d’un agent technique ; Expérimentation animale en zone A1 et A2 ; Expérimentation cellulaire en L2

    Techniques utilisées : Modèle murin de pneumonie à Staphylococcus aureus, modèle murin de lésion médullaire (SCI); Cytométrie en flux (Facs LSR-II, Fortessa X20 et Canto II), Tri cellulaire par billes magnétiques ou trieur Aria II Culture cellulaire de cellules NKT de foie de souris; Culture bactérienne, Dénombrement bactérien; ELISA

    Logiciels utilisés : Microsoft Office, APAFIS, PubMed, Zotero, NDP.view, Fiji, SIOX, BDFacsDiva et Flowjo, GraphPad Prism

  • Hôpital Necker, CNRS UMR 8147 (Paris, France) - Assistante ingénieur

    Paris 2011 - 2012 Stage de recherche d'un an sur les lymphocytes T4 et le virus HTLV-I.

    Techniques utilisées : Cytométrie en flux (FacsCanto), tri cellulaire par billes magnétiques ou par tri électronique (FacsAria), congélation DMSO, culture de lignées cellulaires, culture du virus HTLV-I à partir de la lignée MT-2, Ultracentrifigation; ELISA.

    Logiciels utilisés : Microsoft Office, PubMed, BDFacsDiva et Flowjo, GraphPad Prism

  • Hôpital Antoine-Béclère, Service bactériologie (Clamart, France) - Assistante technique

    2008 - 2008 Séquençage de l’ADNr 16S pour identification bactérienne par PCR universelle

    Conception et réalisation de protocoles expérimentaux ; Management d’un technicien
    Techniques utilisées : Extraction ADN bactérien, RT-PCR, Séquençage, utilisation de Blast

  • Université d'Orsay Paris XI, CNRS (Orsay, France) - Technicien animalier

    2007 - 2007 Bien-être des animaux ; Nettoyage des cages par autoclave

  • INSERM U756_Faculté de pharmacie Paris XI (Châtenay-Malabry, France) - Stage universitaire

    2006 - 2006 Etude sur le rôle de la calpaïne dans l’apoptose induite par le Rotavirus

    Apprentissage de Techniques expérimentales : Western blot, culture lignée cellulaire Caco2, infection cellulaire par Rotavirus, dénombrement cellulaire et viral.

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