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Sarah GALLET

HAZEBROUCK

En résumé

Titulaire d’un Master Biologie-Biotechnologie parcours Génie Cellulaire et Moléculaire, je suis actuellement ingénieure d'étude à l'INSERM. Je souhaiterai trouver un poste pérenne en recherche et développement au sein d'un laboratoire public, d’une entreprise biotechnologique, pharmaceutique ou agroalimentaire.

COMPETENCES:
-Techniques :
Extraction d'ADN et d'ARN
Design de primers
RT-PCR
PCR
PCR en temps réel
Génotypage
Culture cellulaire animale et humaine
Cytométrie en flux
Transfection et infection de cellules
Transformation de bactéries
Purification de plasmides
Coupe au cryostat et au microtome
Immunomarquage
Microscopie à fluorescence
Microscopie électronique
Extraction et dosage protéique
ELISA
Western-blot
Expérimentation animale Microdissection, injection IP IV ICV, perfusion intra-cardiaque, chirurgie): Diplôme d'expérimentation animale de niveau I et de procédures expérimentales chirurgicales AUEC
Culture cellulaire bactérienne
Veille technologique
Mise en place de protocoles
Plan d’expérience
Suivi du développement d'un projet de recherche (de la phase de préfaisabilité au transfert en production)

-Autres compétences d'intérêt général:
Encadrement de stagiaires
Rédaction de procédure de manipulation en L2
Rédaction d’un dossier OGM

-Formations complémentaires:
Expérimentation animale de niveau I
Procédures expérimentales chirurgicales AUEC
Responsable L2/L3
Assistant de prévention
Photoshop : traitement photographique
Fondamentaux Image J
Équipier première intervention
Habilitation à l’utilisation d’équipement sous pression

-Informatiques:
Word, Excel, PowerPoint, Photoshop, SigmaPlot, Nemrodw, PubMed, Blast

-Linguistiques:
Anglais: bon niveau professionnel
Espagnol: niveau intermédiaire

Mes compétences :
Veille technologique
Plan d'expérience
Transfection cellulaire
Transformation de bactéries
Expérimentation animale
Immunomarquage
Culture primaire animale ou humaine
Western-blot
PCR, RT-PCR
Neurosciences
Cytométrie en flux

Entreprises

  • INSERM U1172 - Ingénieur d'étude en biologie (CDD)

    2011 - maintenant Ingénieur d'étude en biologie (CDD) sous contrat de recherche avec des laboratoires privés à l'INSERM de Lille, UMR-S1172, équipe 2.
    -Mission: Etude du rôle de la mélatonine sur la plasticité de la barrière hémato-encéphalique de l’éminence médiane.
    Etude de l’implication du récepteur orphelin GPR50 dans la schizophrénie.
    -Moyens mis en oeuvre:
    Expérimentation animale(Microdissection, injection IP IV ICV, perfusion intra-cardiaque, chirurgie): Diplôme d'expérimentation animale de niveau I et de procédures expérimentales chirurgicales
    Culture primaire animale et humaine
    Cytométrie en flux
    Infection cellulaire virale
    Extraction d'ADN et d'ARN
    Design de primers
    RT-PCR, PCR, PCR en temps réel
    Génotypage
    Extraction et dosage protéique
    ELISA
    Western-blot
    Coupe au cryostat et au microtome
    Immunomarquage
    Microscopie à fluorescence
    Microscopie électronique
    Rédaction de procédure de manipulation en L2
    Rédaction d’un dossier OGM.
  • Bio-Rad Steenvoorde - Assistant chef projet (stage)

    2011 - 2011 Stage de Master 2 à Bio-Rad, site de Steenvoorde, service de bactériologie alimentaire.

    Objectif du stage :
    Développement d’un milieu de culture chromogénique pour la détection de Pseudomonas aeruginosa dans les eaux de boissons.

    -Optimisation du système tampon pH (concentrations, solutions…) pour maintenir le pH à une valeur cible.
    -Optimisation du type d’agar et de la concentration.
    -Développement d’une formule inhibitrice afin d’éliminer toutes les souches non cibles.
    -Analyse des activités enzymatiques de différentes souches bactériennes.
    Détection des souches cibles par coloration des colonies grâce à la présence d’un substrat chromogénique dans le milieu de culture clivé par l’activité enzymatique spécifique de cette souche.

    Expérience pratique acquise:
    -Développement d’un projet de recherche : de la phase de préfaisabilité à la phase de transfert en production
    -Culture cellulaire bactérienne (préparation de milieu de culture, relance et conservation de souches bactériennes…)
    -Veille technologique
    -Mise en place de protocoles
    -Plan d’expérience: logiciel Nemrodw
  • INSERM UMR-S1172 Lille - Assistant de recherche (stage)

    2010 - 2010 Stage de Master 1 à l’INSERM de Lille, équipe 2, UMR-S1172.

    Objectif du stage:
    Etude de la plasticité morphologique des neurones à GnRH, rôle de la Sémaphorine7A.

    -Etude de la plasticité morphologique au niveau de l’éminence médiane du cerveau pendant le cycle menstruel de la femme.
    -Immunomarquage : Triple marquage, de la Séma7A et de deux types cellulaires neuraux, afin de déterminer les cellules sécrétrices de la Séma7A
    -Culture cellulaire (congélation, décongélation, entretien de lignées cellulaire…) :
    •De COS7 : fibroblastes utilisés pour la transfection de cellules.
    •De GnV3 : neurones à GnRH
    Culture en milieu conditionné ou co-culture de deux types cellulaires
    -Transformation de bactéries (par choc thermique) : production, amplification et purification de plasmides nécessaire à la transfection des cellules.
    -Western Blot :
    Extraction de protéines à partir de culture cellulaire
    Détermination de la concentration en protéines (dosage BSA)
    Western-blot pour l’étude de la voie de signalisation de la Séma7A.

    Article publié contenant cette étude:
    Semaphorin7A Regulates Neuroglial Plasticity in the Adult Hypothalamic Median Eminence. Parkash J, Messina A, Langlet F, Cimino I, Loyens A, Mazur D, Gallet S, Balland E, Malone S, Pralong F, Cagnoni G, Schellino R, De Marchis S, Mazzone M, Pasterkamp RJ, Tamagnone L, Prévot V, Giacobini P. Nature Communications. 2015 Feb 27;6:6385. doi: 10.1038/ncomms7385.

    Expérience pratique acquise:
    -Culture cellulaire animale
    -Transfection de cellules
    -Transformation de bactéries
    -Purification de plasmides
    -Immunomarquage
    -Microscopie à fluorescence
    -Extraction et dosage protéique
    -Western-blot
    -Expérimentation animale
  • Centre Hospitalier de Saint omer - Technicienne de laboratoire

    2009 - 2009 Technicienne de laboratoire, secteurs hématologie et immunologie, au centre hospitalier de Saint Omer (CDD)
  • Centre Hospitalier de Saint omer - Technicienne de laboratoire (stage)

    2008 - 2008 Stage de 3 mois de DUT Génie Biologique.
    Stage de technicienne de laboratoire au centre hospitalier de Saint Omer, secteur biochimie. Mise en évidence d’une immunoglobuline monoclonale.

Formations

  • USTL Lille 1 (Arras)

    Arras maintenant
  • IUP Génomique Et Protéomique (Villeneuve D'Ascq)

    Villeneuve D'Ascq 2009 - 2011 Mention bien
  • IUP Génomique Et Protéomique GenPro

    Villeneuve D'Ascq 2008 - 2009 Sciences et Technologies, mention Sciences de la vie

    Licence Biologie - Mention Bien
  • IUT

    Villeneuve D'Ascq 2006 - 2008 Analyses Biologiques et Biochimiques

    DUT Génie biologique option Analyses Biologiques et Biochimiques - Mention Bien
  • Lycée Vauban

    Aire Sur La Lys 2003 - 2006 Option Mathématique

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