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Cédric WOUDSTRA

PARIS

Résultats examens 2026

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En résumé

Mes compétences :
Biologie
Biologie cellulaire
Biologie moléculaire
Biology
Cellular biology
Génie biologique
Microbiology
Molecular biology
Pharmacology
Protéines

Entreprises

  • University of Helsinki - Postdoc

    2017 - maintenant Continuing my work on C. botulinum at Miia Lindström's group.

  • DSMZ - Guest Scientist

    2017 - maintenant After successfully passed my PhD in 2016, I decided to expand my scientific horizons by gaining knowledge into single cell genomics, for a future application in C. botulinum research.
    I joined Dr. Anne-Kristin Kaster group at the DSMZ in Germany. Her group is specialized into Single Cell Genomics to investigate Microbial Dark Matter. Their aim is to obtain genomes from new bacterial and archaeal taxa with no sequenced representatives. They used Fluorescent in situ hybridization (FISH) coupled with Fluorescence-activated cell sorting (FACS Aria-III), followed by Multi displacement amplification (MDA) to investigate single cell bacteria and provide direct link information between cell's phylogenetic and metabolic markers by matching phylogeny and function.

  • ANSES - Chargé de projets scientifiques et techniques

    Maisons-Alfort 2009 - 2017 Je suis en charge de la conception d'un kit de détection bactérien par PCR temps réels.
    D'autre part je suis également coordinateur adjoint d'un groupe de travail sur un projet Européen.

  • INSERM - Ingénieur d'études

    PARIS 13 2008 - 2009 Je travaille à l'INSERM en poste d'ingénieur d'études, dans l'équipe U730 de Cécile Julier dont le sujet principal de recherche porte sur le diabète juvénile.
    Ma mission consiste donc à rechercher de nouveaux gènes impliqués dans cette pathologie.
    Il s'agit donc d'un travail de recherche fondamentale en génétique des populations.
    Pour y parvenir, des expériences de biologie moléculaire sont réalisées (PCR, séquençage) sur des sujets malades, afin de rechercher les gènes mis en jeu.
    Je suis en charge également de la gestion des commandes laboratoire .

  • Bioprojet Biotech - Technicien de recherche

    2007 - 2007 CDD de 6 mois au sein des laboratoires Bioprojet Biotech, département de biochimie (Rennes 35)

    - Poste : Mise au point de techniques in vitro et in vivo spécifiques, afin d’évaluer le potentiel thérapeutique de molécules innovantes dans les domaines neuropsychiatrique (addiction) et oncologique (inhibiteur de l’angiogenèse tumorale et métastatique).

    -Compétences acquises : Culture et transfection de cellules eucaryotes (NG-108.15, CHO), extraction ARN, RT-PCR quantitative, screening haute densité (HTS) par mitogenèse in vitro (incorporation de thymidine [3H]), expériences d’angiogenèse in vivo (souris SWISS, C57).

  • Biomérieux - Stagiaire

    MARCY-L'ETOILE 2006 - 2006 « Elaboration d’un kit de détection bactérien » : Etude de l’impact de la biocontamination et évaluation de plusieurs méthodes de tests microbiologiques. Mise en œuvre de la technologie NASBA pour la différenciation taxonomique du genre bactérien Streptomyces.

    Compétences acquises : Culture bactérienne, extraction d’ARN, définition d’amorces et sondes, amplification en temps réel NASBA®, utilisation de puces Affimetrix® et Agilent®. Travail en environnement ISO9001.

  • Scottish fish immunology research centre - Stagiaire

    2004 - 2004 2004 Stage de Maîtrise en génétique moléculaire (4 mois) au Scottish fish immunology research centre (Ecosse, Aberdeen)

    Sujet : « Cloning and expression analysis of IRF7 gene » : Obtention de la séquence complète de l’ADNc de l’IRF7 chez la truite, et de son profil d’expression par PCR.

    Compétences : RT-PCR, séquençage et traitement bioinformatique, analyse d’expression, culture cellulaire.

  • Laboratoire d'analyses Biologiques Berdeil - Technicien

    2003 - 2005 été 2005/ été 2003 CDD (2x 3 mois) en laboratoire d’analyses biologiques (Foix 09)
    -Poste : Utilisation d’automates d’analyses sériques (ADVIA), chimiques (VITROS, VITEK), tests immunologiques et bactérien. Travail en environnement BPL.

  • INSERM - Stagiaire

    PARIS 13 2002 - 2002 2002 Stage de DUT (3 mois) à l’INSERM en génétique microbiologique (Clermont-Ferrand 63)

    Sujet : « Recherche de partenaires protéiques de la protéine TOUCAN chez la drosophile » : Caractérisation des domaines d’interaction protéine-protéine par technique de « double hybride » en levure.

    Compétences : Clonage et mutagenèse dirigée, transformation et culture de bactéries, levures, PCR.

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